| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-22页 |
| 1.1 植物内生菌研究概况 | 第11页 |
| 1.2 药用植物内放线菌的功能 | 第11-19页 |
| 1.2.1 农业生产作用 | 第12-14页 |
| 1.2.2 环境中的应用 | 第14-15页 |
| 1.2.3 药用作用 | 第15-19页 |
| 1.3 藜芦（Vertrum nigrum L.） | 第19-20页 |
| 1.3.1 藜芦的药理和毒理性质 | 第19-20页 |
| 1.3.2 藜芦属植物化合物的多样性 | 第20页 |
| 1.4 研究的目的意义及内容 | 第20-21页 |
| 1.4.1 研究目的和意义 | 第20-21页 |
| 1.4.2 研究的内容 | 第21页 |
| 1.5 课题来源 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 植物样品 | 第22页 |
| 2.1.2 活性测试菌株 | 第22-23页 |
| 2.2 试剂与仪器 | 第23-24页 |
| 2.3 主要培养基和试剂的配制方法 | 第24-26页 |
| 2.3.1 分离培养基 | 第24页 |
| 2.3.2 纯培养培养基 | 第24页 |
| 2.3.3 发酵培养基 | 第24页 |
| 2.3.4 菌丝体培养培养基 | 第24-25页 |
| 2.3.5 大肠杆菌培养基 | 第25页 |
| 2.3.6 活性测试培养基 | 第25页 |
| 2.3.7 生理生化实验培养基 | 第25页 |
| 2.3.8 放线菌形态观察培养基 | 第25-26页 |
| 2.3.9 主要试剂 | 第26页 |
| 2.4 藜芦内生放线菌的分离与纯化 | 第26-27页 |
| 2.4.1 采样及前处理 | 第26-27页 |
| 2.4.2 藜芦内放线菌的分离、纯化 | 第27页 |
| 2.5 抗菌生物活性的检测 | 第27-28页 |
| 2.5.1 发酵液预处理 | 第27页 |
| 2.5.2 发酵液抑制细菌活性检测 | 第27-28页 |
| 2.5.3 抑制真菌活性检测 | 第28页 |
| 2.6 新种的分类学鉴定 | 第28-38页 |
| 2.6.1 形态和培养特征鉴定 | 第28-29页 |
| 2.6.2 生理生化特征检测 | 第29-30页 |
| 2.6.3 化学分类鉴定 | 第30-34页 |
| 2.6.4 分子水平鉴定 | 第34-38页 |
| 3 结果与分析 | 第38-55页 |
| 3.1 藜芦内生放线菌分离 | 第38-39页 |
| 3.2 抑菌活性检测 | 第39-41页 |
| 3.2.1 抗指示细菌活性检测 | 第39页 |
| 3.2.2 真菌对峙实验 | 第39-41页 |
| 3.3 NEAU–FHS4鉴定结果分析 | 第41-55页 |
| 3.3.1 16S rDNA基因测序及系统发育分析 | 第41-45页 |
| 3.3.2 生长形态和培养特征 | 第45-47页 |
| 3.3.3 生理生化特征 | 第47-48页 |
| 3.3.4 细胞化学组分分析结果 | 第48-52页 |
| 3.3.5 菌株的(G+C) mol%含量 | 第52-53页 |
| 3.3.6 DNA同源性检测结果 | 第53-55页 |
| 4 讨论 | 第55-56页 |
| 5 结论 | 第56-57页 |
| 5.1 本研究主要结论 | 第56页 |
| 5.2 本研究主要创新点及展望 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第68页 |