摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 引言 | 第9-24页 |
1.1 木薯种质资源概况 | 第9-10页 |
1.1.1 国际木薯种质资源概况 | 第9页 |
1.1.2 国内木薯种质资源概况 | 第9-10页 |
1.2 木薯分子细胞遗传学研究概况 | 第10-11页 |
1.2.1 木薯核型的研究 | 第10-11页 |
1.2.2 木薯基因定位研究进展 | 第11页 |
1.3 转化酶基因家族 | 第11-13页 |
1.3.1 转化酶 | 第11-12页 |
1.3.2 中性/碱性转化酶基因家族 | 第12-13页 |
1.3.3 中性/碱性转化酶基因家族在木薯中的研究情况 | 第13页 |
1.4 荧光原位杂交技术概述 | 第13-18页 |
1.4.1 荧光原位杂交技术的原理 | 第13-14页 |
1.4.2 荧光原位杂交技术的主要操作步骤 | 第14-17页 |
1.4.3 荧光原位杂交技术的发展 | 第17-18页 |
1.5 原位PCR技术的概述 | 第18-22页 |
1.5.1 原位PCR技术的基本原理 | 第19页 |
1.5.2 植物原位PCR技术的主要操作步骤 | 第19-21页 |
1.5.3 植物原位PCR技术的应用进展 | 第21-22页 |
1.6 研究的目的意义及技术路线 | 第22-24页 |
1.6.1 目的意义 | 第22-23页 |
1.6.2 技术路线 | 第23-24页 |
2 材料与方法 | 第24-35页 |
2.1 材料与试剂 | 第24-25页 |
2.1.1 实验材料 | 第24页 |
2.1.2 实验试剂 | 第24页 |
2.1.3 实验的主要仪器 | 第24-25页 |
2.2 试验方法 | 第25-35页 |
2.2.1 染色体标本的制备方法 | 第25-26页 |
2.2.2 木薯基因组DNA的提取及检测 | 第26-27页 |
2.2.3 特异引物的合成与筛选及目的片段的获得 | 第27-29页 |
2.2.4 探针的制备与纯化 | 第29-30页 |
2.2.5 木薯荧光原位杂交技术流程 | 第30-32页 |
2.2.6 木薯原位PCR技术流程 | 第32-34页 |
2.2.7 数据处理 | 第34-35页 |
3 结果与分析 | 第35-49页 |
3.1 木薯染色体标本制备方法的优化 | 第35-36页 |
3.1.1 木薯叶片染色体标本制备方法的优化 | 第35-36页 |
3.1.2 木薯叶片与根尖制备的染色体标本的对比 | 第36页 |
3.2 木薯SC6基因组DNA的检测 | 第36-37页 |
3.3 特异引物的筛选及基因特异DNA序列的扩增结果 | 第37-38页 |
3.3.1 一轮扩增产物的检测 | 第37-38页 |
3.3.2 二轮扩增产物的检测 | 第38页 |
3.4 木薯荧光原位杂交体系的优化 | 第38-40页 |
3.5 中性/碱性转化酶基因家族的物理定位分析 | 第40-48页 |
3.5.1 MeNINV2和MeNINV3基因的FISH检测与物理定位分析 | 第40-41页 |
3.5.2 MeNINV4和MeNINV8基因的FISH检测与物理定位分析 | 第41-42页 |
3.5.3 MeNINV7基因的FISH和原位PCR检测与物理定位分析 | 第42-44页 |
3.5.4 MeNINV9和MeNINV10基因的FISH检测与物理定位分析 | 第44-45页 |
3.5.5 MeNINV6基因的FISH检测与物理定位分析 | 第45-46页 |
3.5.6 MeNINV5初nINV1基因的原位PCR检测与物理定位分析 | 第46-48页 |
3.6 中性/碱性转化酶基因家族内各基因之间位置关系的分析 | 第48-49页 |
4 讨论 | 第49-53页 |
4.1 关于木薯染色体标本制备的问题 | 第49-50页 |
4.1.1 关于制片材料的选择问题 | 第49页 |
4.1.2 叶片制片方法的优化 | 第49-50页 |
4.2 基因物理定位方法的选择 | 第50-51页 |
4.2.1 功能基因物理定位常用的方法 | 第50页 |
4.2.2 本研究中各基因物理定位方法的选择 | 第50-51页 |
4.3 FISH技术要点的讨论 | 第51-52页 |
4.4 N/A-Inv基因与已定位的功能基因的位置关系 | 第52-53页 |
5 结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-63页 |
缩略语 | 第63-64页 |
试剂的配制 | 第64-67页 |
本研究资金来源及论文发表情况 | 第67-68页 |
致谢 | 第68页 |