| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 英文缩略语 | 第15-17页 |
| 第一章 引言 | 第17-22页 |
| 1.1 髓系肿瘤 | 第17-19页 |
| 1.2 表观遗传学与DNA甲基化 | 第19-20页 |
| 1.3 DLX4 | 第20-22页 |
| 第二章 研究目的、方案设计、意义 | 第22-24页 |
| 2.1 研究目的 | 第22页 |
| 2.2 研究方法设计 | 第22-23页 |
| 2.3 研究的意义 | 第23-24页 |
| 第三章 材料和方法 | 第24-37页 |
| 3.1 材料 | 第24-26页 |
| 3.1.1 研究对象 | 第24页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第24-25页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第25页 |
| 3.1.4 引物 | 第25-26页 |
| 3.2 方法 | 第26-37页 |
| 3.2.1 骨髓单个核细胞的分离、提取总RNA和基因组DNA | 第26-27页 |
| 3.2.2 亚硫酸盐修饰基因组DNA | 第27页 |
| 3.2.3 逆转录合成c DNA | 第27-28页 |
| 3.2.4 实时定量PCR检测DLX4的表达 | 第28-29页 |
| 3.2.5 实时定量甲基化特异性PCR检测DLX4甲基化的水平 | 第29-32页 |
| 3.2.6 亚硫酸氢盐测序PCR检测DLX4甲基化的密度 | 第32-33页 |
| 3.2.7 PCR产物纯化回收 | 第33-34页 |
| 3.2.8 重组载体构建 | 第34页 |
| 3.2.9 重组质粒转化 | 第34-35页 |
| 3.2.10 重组质粒提取 | 第35页 |
| 3.2.11 质粒鉴定、测序 | 第35页 |
| 3.2.12 阳性模板建立 | 第35页 |
| 3.2.13 细胞遗传学检查 | 第35-36页 |
| 3.2.14 基因突变检测 | 第36页 |
| 3.2.15 融合基因检测 | 第36页 |
| 3.2.16 统计学处理 | 第36-37页 |
| 第四章 结果 | 第37-59页 |
| 4.1 AML中DLX4表达、甲基化及其相关关系 | 第37-50页 |
| 4.1.1 对照组和AML患者中DLX4表达 | 第37页 |
| 4.1.2 AML患者中DLX4表达的ROC曲线 | 第37-38页 |
| 4.1.3 DLX4表达与AML患者临床参数的相关性 | 第38-40页 |
| 4.1.4 DLX4表达与AML患者预后的关系 | 第40-42页 |
| 4.1.5 对照组和AML患者中DLX4启动子1甲基化水平 | 第42-43页 |
| 4.1.6 对照组和AML患者中DLX4启动子2甲基化水平 | 第43-45页 |
| 4.1.7 AML患者中DLX4甲基化的ROC曲线 | 第45-46页 |
| 4.1.8 DLX4甲基化与AML患者临床参数的相关性 | 第46-47页 |
| 4.1.9 DLX4甲基化与AML患者预后的关系 | 第47-49页 |
| 4.1.10 AML患者中DLX4甲基化与表达的关系 | 第49页 |
| 4.1.11 AML细胞株中 5-aza-d C对DLX4甲基化和表达的影响 | 第49-50页 |
| 4.2 CML中DLX4表达、甲基化及其相关关系 | 第50-54页 |
| 4.2.1 CML患者中DLX4甲基化 | 第50-51页 |
| 4.2.2 同一CML患者不同时期DLX4甲基化 | 第51-52页 |
| 4.2.3 CML患者中DLX4甲基化的ROC曲线 | 第52-53页 |
| 4.2.4 DLX4甲基化与CML患者临床参数的相关性 | 第53页 |
| 4.2.5 CML患者中DLX4甲基化与表达的关系 | 第53-54页 |
| 4.2.6 CML细胞株中 5-aza-d C对DLX4的甲基化和表达的影响 | 第54页 |
| 4.3 MDS中DLX4甲基化的临床意义 | 第54-59页 |
| 4.3.1 MDS患者中DLX4甲基化 | 第54-56页 |
| 4.3.2 MDS患者中DLX4甲基化的ROC曲线 | 第56页 |
| 4.3.3 DLX4甲基化与MDS患者临床参数的相关性 | 第56-57页 |
| 4.3.4 DLX4甲基化与MDS患者预后的关系 | 第57-59页 |
| 第五章 讨论 | 第59-63页 |
| 第六章 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文及其他科研成果 | 第73-75页 |
