| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 第一章 PTX3在真菌感染角膜中的表达 | 第11-32页 |
| 1.1 实验材料 | 第11-15页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第11-12页 |
| 1.1.2 实验主要仪器和设备 | 第12页 |
| 1.1.3 实验主要试剂和耗材 | 第12-15页 |
| 1.2 实验方法 | 第15-24页 |
| 1.2.1 临床标本收集 | 第15页 |
| 1.2.2 烟曲霉菌抗原刺激液的制备 | 第15-16页 |
| 1.2.3 烟曲霉菌感染角膜炎大鼠模型的建立 | 第16页 |
| 1.2.4 永生化人角膜上皮细胞（HCECs）烟曲霉菌感染模型的建立 | 第16-17页 |
| 1.2.5 苏木素-伊红染色（HE染色） | 第17-18页 |
| 1.2.6 免疫组织化学染色（IHC染色） | 第18-19页 |
| 1.2.7 实时荧光定量PCR（RT-PCR） | 第19-21页 |
| 1.2.8 Western Blot | 第21-24页 |
| 1.3 统计学处理 | 第24页 |
| 1.4 结果 | 第24-29页 |
| 1.4.1 形态学观察 | 第24-25页 |
| 1.4.2 烟曲霉菌感染角膜后的组织病理学改变 | 第25-26页 |
| 1.4.3 PTX3在人角膜上皮中的表达 | 第26-27页 |
| 1.4.4 PTX3在烟曲霉菌感染角膜炎大鼠模型中的表达 | 第27-28页 |
| 1.4.5 PTX3在烟曲霉菌刺激时永生化人角膜上皮细胞中的表达 | 第28-29页 |
| 1.5 讨论 | 第29-32页 |
| 第二章 PTX3在烟曲霉菌感染角膜上皮细胞时的调控机制 | 第32-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第32-35页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第32页 |
| 2.1.2 实验主要仪器和设备 | 第32-33页 |
| 2.1.3 实验主要试剂和耗材 | 第33-35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-40页 |
| 2.2.1 烟曲霉菌抗原刺激液的制备 | 第35页 |
| 2.2.2 永生化人角膜上皮细胞烟曲霉菌感染模型的建立和预处理 | 第35页 |
| 2.2.3 实时荧光定量PCR（RT-PCR） | 第35-37页 |
| 2.2.4 Western Blot | 第37-40页 |
| 2.3 统计学处理 | 第40页 |
| 2.4 结果 | 第40-42页 |
| 2.4.1 形态学观察 | 第40页 |
| 2.4.2 Dectin-1/Syk信号轴对PTX3表达的调节作用 | 第40页 |
| 2.4.3 MAPK信号通路对PTX3表达的调节作用 | 第40-42页 |
| 2.5 讨论 | 第42-45页 |
| 第三章 PTX3在角膜上皮抗烟曲霉菌固有免疫中的作用 | 第45-59页 |
| 3.1 实验材料 | 第45-48页 |
| 3.1.1 实验对象 | 第45页 |
| 3.1.2 实验主要仪器和设备 | 第45-46页 |
| 3.1.3 实验主要试剂和耗材 | 第46-48页 |
| 3.2 实验方法 | 第48-54页 |
| 3.2.1 烟曲霉菌抗原刺激液的制备 | 第48页 |
| 3.2.2 永生化人角膜上皮细胞真菌感染模型的建立和预处理 | 第48页 |
| 3.2.3 实时荧光定量PCR（RT-PCR） | 第48-51页 |
| 3.2.4 Western Blot | 第51-53页 |
| 3.2.5 酶联免疫吸附试验（ELISA） | 第53-54页 |
| 3.3 统计学处理 | 第54页 |
| 3.4 结果 | 第54-56页 |
| 3.4.1 形态学观察 | 第54页 |
| 3.4.2 阻断内源性PTX3对烟曲霉菌刺激HCECs时IL-1β表达的影响 | 第54-55页 |
| 3.4.3 阻断内源性PTX3对烟曲霉菌刺激HCECs时MAPK蛋白的影响 | 第55-56页 |
| 3.5 讨论 | 第56-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 综述 PTX3在固有免疫中的作用 | 第65-87页 |
| 参考文献 | 第77-87页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第87-88页 |
| 附录 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
