| 致谢 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1.文献综述 | 第12-32页 |
| ·植物根系发生发育的研究进展 | 第12-15页 |
| 引言 | 第12页 |
| ·植物根系的形态结构 | 第12-13页 |
| ·主根(胚生根)的发育过程 | 第13页 |
| ·胚后根形态结构和发生发育方式 | 第13-15页 |
| ·侧根的形态结构和发生发育方式 | 第13-14页 |
| ·不定根的形态结构发生发育过程 | 第14-15页 |
| ·根系伸长调控机制 | 第15-26页 |
| ·植物激素 | 第15-18页 |
| ·细胞周期 | 第18-19页 |
| ·根分生组织 | 第19-22页 |
| ·营养元素对根长生长发育的影响 | 第22-26页 |
| ·植物对铁和锰吸收研究进展 | 第26-31页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第31-32页 |
| 2.突变体的筛选及表型分析 | 第32-41页 |
| ·材料与方法 | 第32-35页 |
| ·供试材料 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32-35页 |
| ·突变体筛选 | 第32页 |
| ·水稻生长条件 | 第32页 |
| ·表型分析 | 第32-35页 |
| ·表型观察 | 第32-33页 |
| ·植株生长与根部参数分析 | 第33页 |
| ·细胞调亡(埃文斯蓝Evans Blue法和3,3-二氨基联苯胺(DAB)) | 第33页 |
| ·活性氧测定(NBT(氯化硝基四氮唑蓝)和DAB(3,3-二氨基联苯胺)染色法) | 第33页 |
| ·地上部分茎的负向重力性反应分析 | 第33-34页 |
| ·水稻营养液的配制 | 第34页 |
| ·根部细胞的组织形态学观察 | 第34-35页 |
| ·结果与分析 | 第35-40页 |
| ·突变体的筛选和突变体的表型分析 | 第35-36页 |
| ·根部的组织切片分析 | 第36-37页 |
| ·细胞调亡(埃文斯蓝Evans Blue法) | 第37-38页 |
| ·茎负向地性分析 | 第38页 |
| ·Osslr1对缺钙超敏 | 第38-39页 |
| ·Osslr1根系伸长受氮饥饿的强烈诱导 | 第39-40页 |
| ·小结 | 第40-41页 |
| 3.基因克隆及基因表达分析 | 第41-61页 |
| ·材料与方法 | 第41-54页 |
| ·供试材料 | 第41页 |
| ·试验方法 | 第41-54页 |
| ·F_2群体的构建及遗传分析 | 第41页 |
| ·突变基因的遗传分析和F_2群体DNA的提取 | 第41-42页 |
| ·突变基因的图位克隆 | 第42-44页 |
| ·精细定位的分子标记 | 第44-45页 |
| ·RNA提取及RT-PCR | 第45-46页 |
| ·RNA提取 | 第45页 |
| ·RNA逆转录 | 第45-46页 |
| ·RT-PCR | 第46页 |
| ·基因克隆与测序分析 | 第46-47页 |
| ·回复载体构建 | 第47-48页 |
| ·启动子融合GUS载体构建 | 第48-50页 |
| ·GUS染色及显微观察 | 第50-52页 |
| ·Southern杂交对转基因回复株系的分子验证 | 第52-54页 |
| ·结果与分析 | 第54-60页 |
| ·基因定位群体的创建和遗传分析 | 第54-55页 |
| ·SLR1基因定位和克隆 | 第55-60页 |
| ·突变基因的定位 | 第55-56页 |
| ·候选基因的分析 | 第56-58页 |
| ·SLR1基因表达模式 | 第58-60页 |
| ·小结 | 第60-61页 |
| 4 SLR1蛋白的生物信息学分析及其蛋白的亚细胞定位 | 第61-71页 |
| ·材料与方法 | 第61-64页 |
| ·材料 | 第61页 |
| ·方法 | 第61-64页 |
| ·基因家族的进化分析 | 第61-62页 |
| ·基因亚细胞定位分析 | 第62-64页 |
| ·基因与GFP融合载体的构建 | 第62页 |
| ·基因枪法转化洋葱表皮细胞 | 第62-64页 |
| ·轰击前受体材料的预处理 | 第62页 |
| ·微弹的准备 | 第62-63页 |
| ·DNA的包裹 | 第63页 |
| ·PDS-1000/He型基因枪的操作 | 第63-64页 |
| ·轰击后样品的处理 | 第64页 |
| ·GFP荧光的观察 | 第64页 |
| ·结果 | 第64-70页 |
| ·SLR1基因的生物信息学分析 | 第64-66页 |
| ·进化树分析 | 第66-69页 |
| ·OsSLR1蛋白的亚细胞定位 | 第69-70页 |
| ·小结 | 第70-71页 |
| 5.突变体对锰和铁的吸收受到抑制 | 第71-81页 |
| ·供试材料 | 第71页 |
| ·实验方法 | 第71-73页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第71页 |
| ·ICP-MS测定Osslr1和野生型中金属元素的含量 | 第71页 |
| ·半定量、定量RT-PCR分析Fe和Mn吸收、转运相关的基因表达 | 第71-73页 |
| ·结果与分析 | 第73-80页 |
| ·Osslr1对Fe(Ⅲ)的吸收受到抑制 | 第73页 |
| ·slr1突变体的主根对锰毒害超敏而地上部分能抗锰毒害 | 第73-75页 |
| ·slr1突变体锰和铁等二价金属离子含量下降 | 第75-76页 |
| ·Osslr1和野生型在不同供Fe状态下,地上部分和根中锰、铁及其他金属离子含量的比较 | 第76-77页 |
| ·野生型植株在不同Fe供应条件下,Fe和Mn吸收相关基因的表达 | 第77-79页 |
| ·电子传梯链支路基因和线粒体基因MnSODs的表达 | 第79-80页 |
| ·结论 | 第80-81页 |
| 结论与展望 | 第81-84页 |
| 参考文献 | 第84-97页 |
| 附录 | 第97页 |
