| 致谢 | 第1-10页 |
| 缩略语表 | 第10-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-39页 |
| 第一部分 植物侧根的发生发育过程研究进展 | 第15-24页 |
| 引言 | 第15页 |
| 1.侧根的发生发育 | 第15-24页 |
| ·侧根的起始过程的调节 | 第16-19页 |
| ·侧根的起始需要auxin和调节蛋白的降解 | 第16页 |
| ·侧根起始过程中的细胞周期调控与auxin信号的关系 | 第16-17页 |
| ·影响侧根起始发育的其他激素 | 第17-18页 |
| ·与激素信号不相关的调节侧根起始路径 | 第18-19页 |
| ·侧根原基起始后的调节过程 | 第19-21页 |
| ·植物激素对侧根原基的发育和分生组织的激活过程的调节 | 第19-20页 |
| ·影响侧根伸长的植物激素 | 第20页 |
| ·参与调控侧根原基发育过程的基因 | 第20-21页 |
| ·营养元素和环境因子对侧根发育的影响和调控 | 第21-24页 |
| ·局部供氮和系统供氮对根结构的影响 | 第21-22页 |
| ·磷对根的构型的调节 | 第22-24页 |
| 第二部分 微管的结构和功能 | 第24-39页 |
| 1 微管的结构 | 第24-31页 |
| ·与细菌FtsZ的同源性 | 第27-28页 |
| ·微管蛋白的侧面连接 | 第28页 |
| ·微管的动态和极性 | 第28-29页 |
| ·微管的核化 | 第29-30页 |
| ·微管结合蛋白MAPs的稳定作用 | 第30页 |
| ·微管的解聚 | 第30-31页 |
| ·联系微管和细胞膜的结构 | 第31页 |
| 2 微管的功能 | 第31-39页 |
| ·维持细胞及器官形态 | 第31-32页 |
| ·参与染色体的运动,调节细胞分裂 | 第32-34页 |
| ·微管蛋白在植物适应低温胁迫中的功能 | 第34-35页 |
| ·微管在盐胁迫中的作用 | 第35页 |
| ·微管与纤维素合成之间的关系 | 第35-36页 |
| ·参与细胞内信号转导 | 第36-39页 |
| ·Ca~(2+)对微管骨架的调节 | 第37页 |
| ·Ca~(2+)和CaM共同调节微管骨架的装配 | 第37页 |
| ·微管骨架对Ca~(2+)通道的调控 | 第37-38页 |
| ·PLD与微管之间的信号转导 | 第38-39页 |
| 第二章 突变体Ostua2的筛选、表型鉴定和基因克隆 | 第39-61页 |
| 1 水稻根毛突变体筛选 | 第39-40页 |
| ·材料 | 第39页 |
| ·方法 | 第39-40页 |
| ·突变体筛选 | 第39页 |
| ·水稻营养液配方 | 第39-40页 |
| ·水稻生长条件 | 第40页 |
| 2 | 第40-45页 |
| ·材料 | 第40-41页 |
| ·方法 | 第41-42页 |
| ·表型观测 | 第41页 |
| ·植株生长与根系参数测定 | 第41页 |
| ·侧根原基形成的观察 | 第41页 |
| ·盆栽及农艺学性状分析 | 第41-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-45页 |
| ·突变体的表型及根部参数 | 第42-44页 |
| ·侧根原基形成的观察 | 第44-45页 |
| ·盆栽条件下突变体农艺性状的分析 | 第45页 |
| 3 突变体的遗传分析及基因克隆 | 第45-46页 |
| ·材料 | 第45-46页 |
| ·方法 | 第46页 |
| ·突变体的F_2群体的构建 | 第46页 |
| ·突变体的遗传分析 | 第46页 |
| ·结果与分析 | 第46页 |
| 4 突变基因的克隆 | 第46-54页 |
| ·材料 | 第46-47页 |
| ·方法 | 第47-52页 |
| ·F_2突变体样品DNA的提取 | 第47-48页 |
| ·图位克隆 | 第48-50页 |
| ·多态标记的选择 | 第48页 |
| ·PCR扩增 | 第48-49页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第49-50页 |
| ·候选基因的确定 | 第50-52页 |
| ·cDNA第一链的制备 | 第50-51页 |
| ·目的基因PCR扩增 | 第51页 |
| ·连接T载体 | 第51-52页 |
| ·热激转化DH5α | 第52页 |
| ·测序和序列比对 | 第52页 |
| ·结果与分析 | 第52-54页 |
| 5 突变体中OsTUA2基因的功能互补验证 | 第54-59页 |
| ·材料 | 第54页 |
| ·方法 | 第54-58页 |
| ·回复载体的构建 | 第54-55页 |
| ·农杆菌介导的水稻(籼稻)转化 | 第55-58页 |
| ·水稻成熟胚愈伤组织的准备 | 第55-56页 |
| ·电转化农杆菌感受态细胞的制备 | 第56页 |
| ·电击法转化农杆菌 | 第56页 |
| ·农杆菌的培养 | 第56-57页 |
| ·共培养及抗性愈伤的筛选 | 第57页 |
| ·抗性愈伤的分化及成苗 | 第57页 |
| ·转基因苗的锻炼和移栽 | 第57-58页 |
| ·RT-PCR分析 | 第58页 |
| ·结果与分析 | 第58-59页 |
| 6 小结与讨论 | 第59-61页 |
| 第三章 水稻OsTUA2基因生物信息学及表达分析 | 第61-68页 |
| 1 OsTUA2和水稻α微管蛋白家族的分析 | 第61-63页 |
| ·方法 | 第61页 |
| ·结果与分析 | 第61-63页 |
| 2 基因表达分析 | 第63-64页 |
| ·材料 | 第63页 |
| ·方法 | 第63-64页 |
| ·结果与分析 | 第64页 |
| 3 OsTUA2蛋白的亚细胞定位分析 | 第64-67页 |
| ·材料 | 第64页 |
| ·方法 | 第64-67页 |
| ·sGFP融合载体的构建 | 第64-65页 |
| ·样品的预处理 | 第65页 |
| ·微弹的制备 | 第65页 |
| ·质粒的包裹 | 第65-66页 |
| ·PDS-1000/He型基因枪的操作步骤 | 第66页 |
| ·轰击后样品的处理 | 第66页 |
| ·GFP荧光的观察 | 第66-67页 |
| ·结果与分析 | 第67页 |
| 4 小结与讨论 | 第67-68页 |
| 第四章 磷胁迫、盐胁迫和药物条件对Ostua2突变体的影响 | 第68-74页 |
| 1 材料 | 第68页 |
| 2 方法 | 第68页 |
| ·磷胁迫处理 | 第68页 |
| ·盐胁迫处理 | 第68页 |
| ·微管抑制剂药物处理 | 第68页 |
| 3 结果与分析 | 第68-72页 |
| ·磷胁迫对突变体的影响 | 第68-70页 |
| ·盐胁迫对突变体的影响 | 第70-71页 |
| ·微管抑制剂对突变体的影响 | 第71-72页 |
| 4 小结与讨论 | 第72-74页 |
| 第五章 结论与展望 | 第74-76页 |
| 1 结论 | 第74-75页 |
| 2 展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-86页 |
