鲢鱼蛋白小肽螯合锌的制备及其生物活性研究
| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略语表 | 第12-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-24页 |
| 1 生物活性肽 | 第13-17页 |
| ·活性肽的分类 | 第13-14页 |
| ·按原料分类 | 第13页 |
| ·按活性肽保健的功能分类 | 第13-14页 |
| ·几种生物活性肽的研究进展 | 第14-17页 |
| ·易消化吸收肽 | 第15页 |
| ·具有抗菌和抗病毒、抑制和破坏肿瘤细胞的作用 | 第15页 |
| ·血管紧张素转换酶抑制肽(简称ACEI肽) | 第15-16页 |
| ·提高生物体免疫能力的活性 | 第16页 |
| ·促进矿物质或微量元素的吸收利用 | 第16-17页 |
| 2 肽在动物体内的吸收机制及其特点 | 第17-18页 |
| ·肽在机体内的吸收机制 | 第17页 |
| ·单胃动物体内的吸收机制 | 第17页 |
| ·反刍动物体内的吸收机制 | 第17页 |
| ·小肽的吸收特点 | 第17-18页 |
| 3 锌的生物功能活性 | 第18-19页 |
| 4 氨基酸螯合锌的制备工艺研究现状 | 第19-20页 |
| ·液相法制备氨基酸螯合物 | 第19页 |
| ·微波固相法制备氨基酸微量元素螯合物 | 第19-20页 |
| ·室温固相合成氨基酸微量元素螯合物 | 第20页 |
| 5 氨基酸螯合锌及多肽锌的研究进展 | 第20-23页 |
| ·氨基酸螯合锌的研究进展 | 第20-22页 |
| ·多肽锌的研究进展 | 第22-23页 |
| 6 研究目的、意义及内容 | 第23-24页 |
| ·目的及意义 | 第23页 |
| ·研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 酶解制备小肽的条件优化 | 第24-39页 |
| 1 材料与方法 | 第24-28页 |
| ·实验材料和仪器设备 | 第24-26页 |
| ·实验材料 | 第24页 |
| ·主要试剂 | 第24-25页 |
| ·仪器及设备 | 第25-26页 |
| ·实验方法 | 第26-28页 |
| ·鲢鱼酶解制备小肽工艺流程 | 第26页 |
| ·酶解工艺参数的确定 | 第26页 |
| ·蛋白酶活力测定 | 第26页 |
| ·蛋白质含量测定方法 | 第26页 |
| ·氨基酸含量的测定方法 | 第26页 |
| ·肽含量的测定方法及肽提取率 | 第26页 |
| ·水解度的测定方法 | 第26-27页 |
| ·平均肽链长度(PCL)的测定 | 第27页 |
| ·小肽分子量分布的测定 | 第27-28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-38页 |
| ·原料鱼蛋白分析 | 第28页 |
| ·酶解鲢鱼蛋白的单一酶的确定 | 第28-29页 |
| ·酶的用量对酶解效果的影响 | 第29-30页 |
| ·底物初始浓度对酶解效果的影响 | 第30-31页 |
| ·反应时间对酶解效果的影响 | 第31-32页 |
| ·反应温度对酶解效果的影响 | 第32页 |
| ·pH值对酶解效果的影响 | 第32-34页 |
| ·起始pH值对酶解效果的影响 | 第33页 |
| ·恒定pH值对酶解效果的影响 | 第33-34页 |
| ·不同处理方式对酶解效果的影响 | 第34-35页 |
| ·风味酶酶解反应时间的确定 | 第35-37页 |
| ·小肽的分子量分布研究 | 第37-38页 |
| 3 小结 | 第38-39页 |
| 第三章 鲢鱼蛋白小肽螯合锌的制备与结构表征 | 第39-56页 |
| 1 材料与方法 | 第39-43页 |
| ·实验材料和仪器设备 | 第39-40页 |
| ·实验材料 | 第39-40页 |
| ·主要试剂 | 第40页 |
| ·仪器设备 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-43页 |
| ·小肽的制备 | 第40页 |
| ·螯合物中锌含量的测定 | 第40-41页 |
| ·锌离子螯合率的测定 | 第41页 |
| ·水相小肽螯合锌的制备方法 | 第41页 |
| ·水相单因素试验及正交试验 | 第41-42页 |
| ·鲢鱼酶解小肽的水相多次螯合 | 第42页 |
| ·丙酮-水混合溶剂相小肽螯合锌的制备方法 | 第42页 |
| ·丙酮-水混合溶剂相单因素试验及正交试验 | 第42-43页 |
| ·小肽螯合锌的结构表征 | 第43页 |
| ·DSC热稳定性分析 | 第43页 |
| 2 结果与讨论 | 第43-55页 |
| ·水相单因素试验及正交试验 | 第43-48页 |
| ·配体与锌离子的摩尔比对螯合率的影响 | 第43-44页 |
| ·反应时间对螯合率的影响 | 第44-45页 |
| ·反应温度对锌离子螯合率的影响 | 第45页 |
| ·反应pH值对锌离子螯合率的影响 | 第45-46页 |
| ·配体浓度对锌离子螯合率的影响 | 第46页 |
| ·小肽螯合锌制备的正交实验结果 | 第46-47页 |
| ·小肽螯合锌制备的正交验证实验 | 第47-48页 |
| ·鲢鱼酶解小肽的水相多次螯合 | 第48页 |
| ·丙酮-水混合溶剂相单因素试验及正交试验 | 第48-52页 |
| ·配体与锌离子的摩尔比对螯合率的影响 | 第48-49页 |
| ·反应时间对螯合率的影响 | 第49页 |
| ·反应温度对锌离子螯合率的影响 | 第49-50页 |
| ·丙酮浓度对锌离子螯合率的影响 | 第50-51页 |
| ·小肽螯合锌制备的正交实验结果 | 第51-52页 |
| ·水相制得小肽螯合锌的结构表征 | 第52-54页 |
| ·紫外光谱分析 | 第52-53页 |
| ·红外光谱分析 | 第53-54页 |
| ·DSC热分析 | 第54-55页 |
| 3 小结 | 第55-56页 |
| 第四章 鲢鱼蛋白小肽螯合锌生物活性研究 | 第56-71页 |
| 1 材料与方法 | 第56-64页 |
| ·实验材料和仪器设备 | 第56-57页 |
| ·实验材料 | 第56页 |
| ·主要试剂 | 第56-57页 |
| ·仪器设备 | 第57页 |
| ·实验动物 | 第57页 |
| ·实验方法 | 第57-64页 |
| ·鲢鱼小肽螯合锌的制备 | 第57页 |
| ·小鼠缺锌饲料的制备 | 第57-59页 |
| ·小鼠缺锌模型的建立 | 第59-60页 |
| ·小肽螯合锌的补锌作用 | 第60页 |
| ·血清锌含量的测定 | 第60页 |
| ·肝脏锌含量的测定 | 第60-61页 |
| ·血清碱性磷酸酶含量的测定 | 第61页 |
| ·小肽螯合锌的抗氧化作用 | 第61-63页 |
| ·小鼠脏器指数的测定 | 第63页 |
| ·数据处理方法 | 第63-64页 |
| 2 结果与分析 | 第64-70页 |
| ·小鼠缺锌模型的建立 | 第64-66页 |
| ·补锌效果研究 | 第66-68页 |
| ·小肽螯合锌的抗氧化作用 | 第68-70页 |
| 3 小结 | 第70-71页 |
| 第五章 结论与展望 | 第71-73页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 本研究的创新点 | 第72页 |
| 展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 附录 (硕士期间发表的论文) | 第83页 |
