摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
英文缩写词表 | 第12-13页 |
第1章 绪论 | 第13-30页 |
·糖尿病的现状及治疗药物 | 第13页 |
·胰岛素 | 第13-18页 |
·胰岛素的研究进展 | 第14-15页 |
·重组人胰岛素的研究进展 | 第15-18页 |
·植物生物反应器 | 第18-28页 |
·植物生物反应器的概念 | 第19页 |
·转基因植物的遗传转化的研究进展 | 第19-23页 |
·利用植物生物反应器生产疫苗的研究进展 | 第23-26页 |
·利用植物生物反应器生产疫苗的优势 | 第26页 |
·马铃薯作为生物反应器生产疫苗研究进展 | 第26-27页 |
·马铃薯作为生物反应器生产植物疫苗的特点 | 第27-28页 |
·马铃薯作为生物反应器生产疫苗的应用前景 | 第28页 |
·本研究的目的和意义 | 第28-30页 |
第2章 patatin启动子驱动的人胰岛素原基因表达载体的构建及其对农杆菌的转化 | 第30-59页 |
·材料 | 第30-34页 |
·菌株、质粒和植物材料 | 第30页 |
·工具酶和试剂 | 第30页 |
·主要仪器 | 第30-31页 |
·培养基与缓冲液 | 第31-34页 |
·方法 | 第34-49页 |
·patatin启动子的克隆 | 第34-38页 |
·Patatin启动子的亚克隆 | 第38-40页 |
·人胰岛素原基因的分子克隆 | 第40-44页 |
·植物表达载体的构建 | 第44-46页 |
·patatin启动子驱动的人胰岛素原基因表达载体转化农杆菌 | 第46-49页 |
·结果与分析 | 第49-56页 |
·patatin启动子的克隆 | 第49-52页 |
·Patatin启动子的亚克隆 | 第52-53页 |
·马铃薯偏好的人胰岛素原基因的克隆 | 第53-55页 |
·植物表达载体的构建 | 第55-56页 |
·patatin启动子驱动的人胰岛素原基因表达载体转化农杆菌 | 第56页 |
·讨论 | 第56-59页 |
·马铃薯核DNA的提取 | 第56-57页 |
·启动子的选择 | 第57-58页 |
·人胰岛素原基因的设计 | 第58页 |
·p1303P05h和p1303P06h的测序分析 | 第58-59页 |
第3章 马铃薯再生体系的建立 | 第59-67页 |
·材料 | 第59-60页 |
·植物材料 | 第59页 |
·试剂 | 第59页 |
·仪器设备 | 第59页 |
·常用溶液的配制 | 第59-60页 |
·方法 | 第60-61页 |
·马铃薯脱毒苗的快繁 | 第60页 |
·愈伤组织的诱导发生和继代培养 | 第60页 |
·马铃薯愈伤组织的分化 | 第60-61页 |
·结果与分析 | 第61-65页 |
·不同激素配比对愈伤组织诱导率的影响 | 第61-63页 |
·不同激素配比对愈伤组织分化率的影响 | 第63-65页 |
·讨论 | 第65-67页 |
·激素配比对马铃薯再生体系的影响 | 第65页 |
·基因型对马铃薯再生体系的影响 | 第65-66页 |
·外植体及愈伤的状态对马铃薯再生体系的影响 | 第66-67页 |
第4章 农杆菌介导的人胰岛素原基因对马铃薯遗传转化 | 第67-77页 |
·材料 | 第67-68页 |
·植物材料 | 第67页 |
·农杆菌菌株 | 第67页 |
·抗生素及分子生物学试剂 | 第67页 |
·仪器设备 | 第67页 |
·常用溶液的配制 | 第67-68页 |
·培养基 | 第68页 |
·方法 | 第68-70页 |
·受体材料对潮霉素(Hyg)敏感性试验 | 第68页 |
·遗传转化系统的优化 | 第68-69页 |
·农杆菌工程菌转化外植体的方法 | 第69-70页 |
·结果与分析 | 第70-74页 |
·潮霉素选择压力的确定 | 第70-71页 |
·预培养时间对茎段转化的影响 | 第71-72页 |
·浸染时间对茎段转化的影响 | 第72页 |
·共培养时间对遗传转化的影响 | 第72-73页 |
·乙酰丁香酮对遗传转化的影响 | 第73页 |
·羧苄青霉素(Carb)浓度对遗传转化的影响 | 第73页 |
·抗性植株的获得 | 第73-74页 |
·讨论 | 第74-77页 |
·预培养和共培养时间对遗传转化的影响 | 第74-75页 |
·选择压力的确定 | 第75页 |
·抑菌剂的选择 | 第75-77页 |
结论 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-88页 |
致谢 | 第88-89页 |
附录A (攻读硕士学位期间所发表的论文) | 第89-90页 |
附录B 马铃薯的密码子偏好表 | 第90页 |