| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 第一章 引言 | 第18-27页 |
| 1.1 研究背景 | 第18页 |
| 1.2 基于代谢组学的营养品质分析 | 第18-19页 |
| 1.3 油料中特质营养成分及其功能 | 第19-21页 |
| 1.3.1 油菜特质营养成分 | 第19-20页 |
| 1.3.2 芝麻特质营养成分 | 第20-21页 |
| 1.4 特质营养成分的检测方法 | 第21-25页 |
| 1.4.1 多酚常用检测方法 | 第23-24页 |
| 1.4.2 芝麻中特质营养成分的检测方法 | 第24-25页 |
| 1.5 影响营养成分积累的因素 | 第25页 |
| 1.6 本课题研究意义和研究内容 | 第25-27页 |
| 1.6.1 本课题研究意义 | 第25-26页 |
| 1.6.2 本课题研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 菜籽总酚确证性以及近红外快速检测技术的建立 | 第27-41页 |
| 2.1 概述 | 第27-28页 |
| 2.2 材料 | 第28页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第28页 |
| 2.2.2 仪器与耗材 | 第28页 |
| 2.3 方法 | 第28-30页 |
| 2.3.1 Folin-Ciocaileu比色法测定菜籽总酚 | 第28-30页 |
| 2.3.1.1 标准溶液配制 | 第28-29页 |
| 2.3.1.2 样品溶液的制备 | 第29页 |
| 2.3.1.3 菜籽样品总酚含量测定 | 第29页 |
| 2.3.1.4 Folin-Ciocaileu比色法方法学评价 | 第29页 |
| 2.3.1.5 对照品溶液总酚的测定 | 第29-30页 |
| 2.3.2 近红外速测技术的建立 | 第30页 |
| 2.3.2.1 近红外光谱采集条件 | 第30页 |
| 2.3.2.2 近红外光谱数据处理与分析 | 第30页 |
| 2.3.2.3 菜籽总酚预测模型的构建 | 第30页 |
| 2.4 数据分析 | 第30页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第30-36页 |
| 2.5.1油菜籽总酚提取工艺单因素实验 | 第30-33页 |
| 2.5.1.1 甲醇浓度对油菜籽总酚提取效果的影响 | 第30-31页 |
| 2.5.1.2 提取时间对油菜籽总酚提取影响 | 第31-32页 |
| 2.5.1.3 料液比对油菜籽总酚含量影响 | 第32-33页 |
| 2.5.2 标准曲线绘制 | 第33-34页 |
| 2.5.3 Folin-Ciocaileu比色法的方法学评价 | 第34页 |
| 2.5.4 近红外光谱采集结果及变量选择分析 | 第34-36页 |
| 2.5.5 近红外光谱预测模型构建与评价 | 第36页 |
| 2.6 菜籽总酚含量差异与环境因子分析 | 第36-40页 |
| 2.6.1 不同产区菜籽总酚含量分布 | 第36-38页 |
| 2.6.2 菜籽总酚与环境因子分析 | 第38-40页 |
| 2.7 小结 | 第40-41页 |
| 第三章 菜籽中酚类化合物靶向代谢组学方法研究 | 第41-54页 |
| 3.1 概述 | 第41页 |
| 3.2 实验材料 | 第41-42页 |
| 3.2.1 实验样品 | 第41页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第41-42页 |
| 3.2.3 仪器与耗材 | 第42页 |
| 3.3 方法 | 第42-45页 |
| 3.3.1 多酚化合物的提取 | 第42-43页 |
| 3.3.2 标准溶液的配制 | 第43页 |
| 3.3.3 HPLC-MS/MS分析条件 | 第43-45页 |
| 3.3.4 定性、定量及数据统计分析 | 第45页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第45-53页 |
| 3.4.1 过载现象 | 第45页 |
| 3.4.2 同位素离子峰避免信号过载 | 第45-46页 |
| 3.4.3 芥子碱同位素离子峰实现定量分析 | 第46-49页 |
| 3.4.4 方法学评价 | 第49-51页 |
| 3.4.4.1 线性范围,检测限和定量限 | 第49-50页 |
| 3.4.4.2 精密度,回收率和基质效应 | 第50-51页 |
| 3.4.5 方法应用 | 第51-53页 |
| 3.5 小结 | 第53-54页 |
| 第四章 超声波辅助萃取-液质联用法同步测定黑白芝麻中差异营养成分 | 第54-74页 |
| 4.1 概述 | 第54-55页 |
| 4.2 实验材料 | 第55-56页 |
| 4.2.1 实验样品 | 第55页 |
| 4.2.2 实验标准品及试剂 | 第55页 |
| 4.2.3 仪器与耗材 | 第55-56页 |
| 4.3 方法 | 第56-60页 |
| 4.3.1 标准溶液的制备 | 第56页 |
| 4.3.2 提取方法 | 第56页 |
| 4.3.3 优化提取工艺参数 | 第56-59页 |
| 4.3.3.1 单因素实验 | 第56-57页 |
| 4.3.3.2 Plackett-Burman设计 | 第57-58页 |
| 4.3.3.3 Box-Behnken设计 | 第58-59页 |
| 4.3.4 HPLC-MS/MS条件 | 第59页 |
| 4.3.5 数据分析 | 第59-60页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第60-73页 |
| 4.4.1 单因素实验优化提取条件 | 第60-64页 |
| 4.4.1.1 甲醇体积分数的影响 | 第60页 |
| 4.4.1.2 提取时间的影响 | 第60-61页 |
| 4.4.1.3 液料比的影响 | 第61-62页 |
| 4.4.1.4 超声功率的影响 | 第62页 |
| 4.4.1.5 超声温度的影响 | 第62-63页 |
| 4.4.1.6 提取次数的影响 | 第63-64页 |
| 4.4.2 Plackett-Burman设计选择重要参数 | 第64页 |
| 4.4.3 Box-Behnken试验与响应面分析 | 第64-68页 |
| 4.4.3.1 建立回归模型 | 第64-66页 |
| 4.4.3.2 响应面分析及最佳提取条件的确定 | 第66-68页 |
| 4.4.4 方法学验证 | 第68-71页 |
| 4.4.4.1 线性方程,检测限和定量限 | 第68-69页 |
| 4.4.4.2 基质效应 | 第69-70页 |
| 4.4.4.3 加标回收率和精密度 | 第70-71页 |
| 4.4.5 黑白芝麻种子营养化合物含量差异分析 | 第71-73页 |
| 4.5 小结 | 第73-74页 |
| 第五章 全文结论 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 作者简历 | 第89页 |
