| 论文创新点 | 第5-6页 |
| 中英文缩略语对照表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Absbract | 第9-15页 |
| 引言 | 第15-18页 |
| 第一部分 日本血吸虫感染小鼠细胞免疫应答的动态变化 | 第18-22页 |
| 1 材料与方法 | 第18-19页 |
| 1.1 主要实验试剂 | 第18页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第18页 |
| 1.3 实验动物与寄生虫 | 第18页 |
| 1.4 ELISA法检测小鼠血清中细胞因子的含量 | 第18-19页 |
| 1.5 统计学分析 | 第19页 |
| 2 结果 | 第19-20页 |
| 3 讨论 | 第20-21页 |
| 4 小结 | 第21-22页 |
| 第二部分 日本血吸虫感染小鼠树突状细胞数量与免疫功能的动态变化 | 第22-31页 |
| 1 材料与方法 | 第22-24页 |
| 1.1 主要实验试剂 | 第22页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第22页 |
| 1.3 实验动物与寄生虫 | 第22-23页 |
| 1.4 小鼠脾脏和骨髓单细胞悬液的制备 | 第23页 |
| 1.5 CD3e~-CD11c~+和CD3e~-CD11c~+CD86~+树突状细胞的流式检测 | 第23页 |
| 1.6 感染日本血吸虫不同时间点小鼠脾脏和骨髓的HE染色 | 第23-24页 |
| 1.7 统计学分析 | 第24页 |
| 2 结果 | 第24-29页 |
| 2.1 CD3e~-CD11c~+和CD3e~-CD11c~+CD86~+树突状细胞的流式检测结果 | 第24-26页 |
| 2.2 感染血吸虫后0d、28d、63 d 小鼠脾脏和骨髓的HE染色结果 | 第26-29页 |
| 3 讨论 | 第29-30页 |
| 4 小结 | 第30-31页 |
| 第三部分 日本血吸虫感染小鼠脾脏树突状细胞转录组的动态变化 | 第31-53页 |
| 1 材料与方法 | 第31-39页 |
| 1.1 主要实验试剂 | 第31页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第31-32页 |
| 1.3 实验动物与寄生虫 | 第32页 |
| 1.4 实验方法 | 第32-39页 |
| 1.5 统计学分析 | 第39页 |
| 2 结果 | 第39-49页 |
| 2.1 小鼠脾脏DCs纯度的流式检测与分选 | 第39-40页 |
| 2.2 韦恩图分析 | 第40-42页 |
| 2.3 GO分析 | 第42-44页 |
| 2.4 KEGG通路分析 | 第44-45页 |
| 2.5 抗原提呈相关基因的聚类分析 | 第45-47页 |
| 2.6 差异表达基因的荧光实时定量PCR验证实验 | 第47-49页 |
| 3 讨论 | 第49-52页 |
| 4 小结 | 第52-53页 |
| 第四部分 日本血吸虫感染小鼠树突状细胞免疫调节机制的研究 | 第53-80页 |
| 1 材料与方法 | 第53-62页 |
| 1.1 主要实验试剂 | 第53-54页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第54页 |
| 1.3 实验动物与日本血吸虫蛋白分子 | 第54-55页 |
| 1.4 实验方法 | 第55-61页 |
| 1.5 统计学分析 | 第61-62页 |
| 2 结果 | 第62-76页 |
| 2.1 骨髓来源树突状细胞的表型和鉴定 | 第62-63页 |
| 2.2 SAWA和SEA对树突状细胞的增殖毒性 | 第63-64页 |
| 2.3 SAWA和SEA对树突状细胞凋亡的影响 | 第64页 |
| 2.4 SAWA和SEA对树突状细胞表型的改变 | 第64-65页 |
| 2.5 SAWA和SEA对树突状细胞和脾细胞DC-SIGN表达的影响 | 第65-66页 |
| 2.6 SAWA和SEA对树突状细胞表达IL-12、IL-10的影响 | 第66-67页 |
| 2.7 SAWA和SEA对DCs相关信号通路的影响 | 第67-70页 |
| 2.8 SAWA和SEA对同种异体脾细胞增殖的影响 | 第70-71页 |
| 2.9 树突状细胞对调节性T淋巴细胞增殖的影响 | 第71-76页 |
| 3 讨论 | 第76-79页 |
| 4 小结 | 第79-80页 |
| 结论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-87页 |
| 综述 | 第87-99页 |
| 参考文献 | 第94-99页 |
| 攻读博士期间的主要科研成果 | 第99-100页 |
| 致谢 | 第100-102页 |
