| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 英文缩写词表 | 第10-13页 |
| 文献综述 | 第13-21页 |
| 技术路线 | 第21-22页 |
| 引言 | 第22-23页 |
| 1 材料与方法 | 第23-40页 |
| 1.1 实验材料 | 第23-25页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第23页 |
| 1.1.2 主要试剂和试剂盒 | 第23-24页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第24-25页 |
| 1.1.4 培养基及主要溶液的配制 | 第25页 |
| 1.2 试验方法 | 第25-39页 |
| 1.2.1 斑马鱼线粒体相关易感基因的筛选实验 | 第25-29页 |
| 1.2.2 采用CRISPR/Cas9技术构建斑马鱼UCP2基因敲除模型实验 | 第29-38页 |
| 1.2.3 UCP2敲除对铝致斑马鱼AD的影响实验 | 第38-39页 |
| 1.3 数据统计分析 | 第39-40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-51页 |
| 2.1 斑马鱼线粒体相关易感基因筛选的结果分析 | 第40-41页 |
| 2.1.1 AlCl_3暴露对斑马鱼行为学的影响 | 第40页 |
| 2.1.2 筛选出斑马鱼线粒体相关易感基因 | 第40-41页 |
| 2.2 斑马鱼UCP2基因敲除模型的建立 | 第41-48页 |
| 2.2.1 获得特异性gRNA | 第41-42页 |
| 2.2.2 获得转录的Cas9-mRNA | 第42-43页 |
| 2.2.3 敲除靶点体内活性检测结果分析 | 第43-45页 |
| 2.2.4 斑马鱼F0代突变体筛选的结果分析 | 第45-46页 |
| 2.2.5 斑马鱼F1代突变体筛选的结果分析 | 第46-47页 |
| 2.2.6 初步验证F2代斑马鱼纯合子 | 第47-48页 |
| 2.3 UCP2在铝致斑马鱼AD中的作用分析 | 第48-51页 |
| 2.3.1 斑马鱼幼鱼的行为学评价结果 | 第48页 |
| 2.3.2 UCP2敲除促进斑马鱼体内ROS的生成 | 第48-49页 |
| 2.3.3 UCP2敲除加快铝致斑马鱼的神经细胞凋亡 | 第49-50页 |
| 2.3.4 UCP2敲除联合铝暴露增加神经相关基因表达上调 | 第50-51页 |
| 3 讨论 | 第51-53页 |
| 4 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 作者简历 | 第61页 |
