中文摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
符号说明 | 第12-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-27页 |
1.1 光信号通路转导机制 | 第13-16页 |
1.1.1 隐花色素的研究进展 | 第13页 |
1.1.2 Cryptochromes和植物的光形态建成 | 第13-14页 |
1.1.3 隐花色素的调控机制 | 第14-16页 |
1.1.3.1 COP1抑制黑暗下光形态建成的发生 | 第14-15页 |
1.1.3.2 HY5是光形态建成的正向调控因子 | 第15-16页 |
1.2 植物的非生物胁迫响应 | 第16-18页 |
1.2.1 盐胁迫对植物的影响 | 第16页 |
1.2.2 植物响应盐胁迫的相关机制 | 第16-18页 |
1.3 ABA信号通路研究进展 | 第18-22页 |
1.3.1 ABA的生物合成 | 第18-19页 |
1.3.2 ABA核心信号转导通路 | 第19-21页 |
1.3.3 ABI5的调节在ABA信号通路中的研究进展 | 第21-22页 |
1.4 bZIP转录因子家族基因TaGBF1 | 第22-23页 |
1.4.1 TaGBF1促进组成型的蓝光形态建成 | 第22-23页 |
1.4.2 ABI5是TaGBF1诱导盐胁迫敏感性的关键因子 | 第23页 |
1.5 CKII家族基因研究进展 | 第23-25页 |
1.6 立题依据与研究内容 | 第25-27页 |
第二章 材料与方法 | 第27-31页 |
2.1 实验材料 | 第27-28页 |
2.1.1 植物材料 | 第27页 |
2.1.2 菌株 | 第27页 |
2.1.3 主要试剂溶液 | 第27-28页 |
2.2 实验方法 | 第28-31页 |
2.2.1 植物材料的培养 | 第28页 |
2.2.2 BiFC | 第28-29页 |
2.2.3 基因的亚细胞定位 | 第29页 |
2.2.4 电镜扫描 | 第29页 |
2.2.5 DNA-蛋白Pull down | 第29页 |
2.2.6 体外转录激活活性检测 | 第29页 |
2.2.7 酵母双杂 | 第29页 |
2.2.8 拟南芥Marker基因表达模式分析 | 第29-31页 |
第三章 小麦CKII调节亚基基因TaCKB4的功能探究 | 第31-59页 |
引言 | 第31页 |
实验结果与分析 | 第31-54页 |
3.1 TaCKB4抑制蓝光下拟南芥的光形态建成 | 第31-36页 |
3.1.1 TaCKB4拟南芥OE系检测 | 第31-32页 |
3.1.2 TaCKB4在光诱导下表达模式分析 | 第32-33页 |
3.1.3 TaCKB4抑制白光下拟南芥的光形态建成 | 第33-34页 |
3.1.4 TaCKB4 OE系下胚轴伸长和细胞变大相关 | 第34-35页 |
3.1.5 TaCKB4抑制光形态建成是蓝光特异的 | 第35-36页 |
3.2 TaCKB4抑制组成型的蓝光形态建成 | 第36-37页 |
3.3 TaGBF1可能直接抑制TaCKB4的表达 | 第37-42页 |
3.3.1 TaCKB4在遗传上位于TaGBF1的下游 | 第38-39页 |
3.3.2 TaGBF1抑制了拟南芥中AtCKB4的表达 | 第39-40页 |
3.3.3 TAGBF1直接结合TaCKB4启动子 | 第40-41页 |
3.3.4 TaGBF1不具有转录激活活性 | 第41-42页 |
3.4 TaCKB4定位于细胞核 | 第42页 |
3.5 TaCKB4和TaGBF1不存在直接相互作用 | 第42-43页 |
3.6 TaCKB4与AtHY5存在直接互作 | 第43-45页 |
3.7 TaCKB4转基因小麦株系的构建 | 第45-46页 |
3.8 TaCKB4在非生物胁迫中的表达模式 | 第46-48页 |
3.9 TaCKB4过表达抑制盐胁迫下萌发 | 第48-50页 |
3.10 TaCKB4影响离子转运相关基因的表达 | 第50-51页 |
3.11 TaCKB4提高了植物对ABA的敏感性 | 第51页 |
3.12 TaCKB4影响了ABA信号通路 | 第51-53页 |
3.13 TaCKB4双重调控ABI5的表达 | 第53-54页 |
讨论 | 第54-59页 |
1. TaGBF1-TaCKB4调控蓝光介导的光形态建成的可能机制 | 第54-56页 |
2. TaCKB4可能通过双重调控光和ABA信号通路提高盐敏感性 | 第56-59页 |
附录 | 第59-61页 |
参考文献 | 第61-73页 |
致谢 | 第73-74页 |
学位论文评阋及答辩情况表 | 第74页 |