摘要 | 第5-7页 |
abstract | 第7-9页 |
第一章 文献综述 | 第12-27页 |
1.1 植物内生菌概述 | 第12-16页 |
1.1.1 植物内生菌的定义 | 第12页 |
1.1.2 内生菌的生物学作用 | 第12-13页 |
1.1.3 内生菌在植物体内的定殖 | 第13-16页 |
1.2 内生菌与农作物相互作用协助抗逆 | 第16-18页 |
1.2.1 自然界中农作物所面临的逆境 | 第16页 |
1.2.2 内生菌与植物的相互作用 | 第16-18页 |
1.3 生物膜 | 第18-22页 |
1.3.1 生物膜的定义 | 第18页 |
1.3.2 生物膜的结构 | 第18-19页 |
1.3.3 生物膜的形成过程 | 第19-20页 |
1.3.4 生物膜的优势 | 第20页 |
1.3.5 生物膜与环二鸟苷酸(cyclic dimeric GMP、c-di-GMP) | 第20-21页 |
1.3.6 生物膜与sRNA | 第21-22页 |
1.4 全局转录因子Cra | 第22-25页 |
1.4.1 细胞内的碳代谢调节 | 第22-24页 |
1.4.2 碳代谢调控因子Cra | 第24-25页 |
1.5 研究的目的与意义 | 第25-26页 |
1.6 技术路线 | 第26-27页 |
第二章 Cra影响Pantoea alhagi LTYR-11Z定殖小麦根系的能力 | 第27-41页 |
2.1 引言 | 第27页 |
2.2 材料和方法 | 第27-36页 |
2.2.1 菌株、质粒和引物 | 第27-29页 |
2.2.2 主要试剂与仪器 | 第29-30页 |
2.2.3 克隆构建 | 第30-34页 |
2.2.4 突变及互补株构建 | 第34-35页 |
2.2.5 蛋白的原核表达与纯化 | 第35页 |
2.2.6 突变体及野生型菌株小麦根部表面定殖能力的检测 | 第35-36页 |
2.3 结果分析 | 第36-41页 |
2.3.1 突变体构建与蛋白纯化 | 第36-37页 |
2.3.2 Cra影响P.alhagi LTYR-11Z对小麦根部的定殖 | 第37-41页 |
第三章 Cra的调控功能鉴定 | 第41-65页 |
3.1 引言 | 第41页 |
3.2 材料和方法 | 第41-52页 |
3.2.1 菌株、质粒和引物 | 第41-47页 |
3.2.2 主要试剂与仪器 | 第47-48页 |
3.2.3 实时定量PCR | 第48-49页 |
3.2.4 β-gal酶活性检测 | 第49页 |
3.2.5 凝胶电泳迁移检测 | 第49-50页 |
3.2.6 胞外多糖定量检测 | 第50页 |
3.2.7 非生物表面生物膜形成能力检测 | 第50-51页 |
3.2.8 运动能力检测 | 第51页 |
3.2.9 体外双鸟苷酸环化酶(DGC)活性检测 | 第51页 |
3.2.10 胞内c-di-GMP水平检测 | 第51-52页 |
3.2.11 其余方法参照第二章 | 第52页 |
3.3 结果分析 | 第52-65页 |
3.3.1 突变体构建与蛋白纯化 | 第52-53页 |
3.3.2 Cra调控的转录组数据分析 | 第53-54页 |
3.3.3 Cra通过促进EPS产生来增加生物膜的形成 | 第54-58页 |
3.3.4 Cra抑制P.alhagi LTYR-11Z的运动能力 | 第58-61页 |
3.3.5 Cra调控通过双鸟苷酸环化酶(DGC)调节胞内c-di-GMP水平 | 第61-65页 |
第四章 碳源影响Cra的调节功能 | 第65-72页 |
4.1 引言 | 第65页 |
4.2 材料和方法 | 第65-66页 |
4.2.1 菌株、质粒和引物 | 第65页 |
4.2.2 主要试剂与仪器参考第二章 | 第65-66页 |
4.2.3 根际分泌物对P.alhagi LTYR-11Z的影响 | 第66页 |
4.2.4 不同碳源对P.alhagi LTYR-11Z定殖的影响 | 第66页 |
4.3 结果分析 | 第66-72页 |
4.3.1 突变体构建 | 第66-67页 |
4.3.2 Cra的调节功能受不同碳源的影响 | 第67-70页 |
4.3.3 P.alhagi LTYR-11Z附着于小麦根系受碳源的影响 | 第70-72页 |
第五章 分析与讨论 | 第72-76页 |
第六章 结论 | 第76-77页 |
参考文献 | 第77-88页 |
附录 | 第88-102页 |
致谢 | 第102-103页 |
作者简介 | 第103页 |