| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第一章 黑木耳液体发酵研究进展 | 第11-17页 |
| 1. 木耳多糖研究概述 | 第11页 |
| 2. 木耳黑色素研究概述 | 第11-13页 |
| 2.1 木耳菌的诱变育种 | 第12页 |
| 2.2 木耳黑色素的生产制备 | 第12页 |
| 2.3 木耳黑色素的结构研究 | 第12页 |
| 2.4 木耳黑色素的生物活性研究 | 第12-13页 |
| 2.4.1 木耳黑色素抗氧化作用 | 第12-13页 |
| 2.4.2 木耳黑素抑菌作用 | 第13页 |
| 3. 促进剂的简介 | 第13-14页 |
| 4. 以豆奶为基质的黑木耳菌发酵 | 第14-15页 |
| 5. 木耳黑色素稳定性 | 第15页 |
| 6. 本课题研究的目的意义与创新点 | 第15-16页 |
| 7. 本课题研究的内容 | 第16-17页 |
| 第二章 黑木耳菌诱变育种 | 第17-24页 |
| 1. 材料与方法 | 第18-19页 |
| 1.1 材料 | 第18页 |
| 1.1.1 菌株 | 第18页 |
| 1.1.2 试剂 | 第18页 |
| 1.1.3 培养基 | 第18页 |
| 1.1.4 主要仪器和设备 | 第18页 |
| 1.4 实验方法 | 第18-19页 |
| 2. 结果与分析 | 第19-22页 |
| 2.1 紫外线对木耳菌的影响 | 第19-20页 |
| 2.2 硫酸二乙酯对木耳菌的影响 | 第20页 |
| 2.3 紫外硫酸二乙酯复合诱变 | 第20-22页 |
| 3. 讨论 | 第22-23页 |
| 4. 本章小结 | 第23-24页 |
| 第三章 促进剂对黑木耳活性成分生物合成的影响 | 第24-38页 |
| 1. 材料与方法 | 第25-27页 |
| 1.1 材料 | 第25-26页 |
| 1.1.1 实验菌种 | 第25页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第25-26页 |
| 1.1.3 培养基 | 第26页 |
| 1.2 方法 | 第26-27页 |
| 1.2.1 接种和培养 | 第26页 |
| 1.2.2 菌体生物量的测定 | 第26页 |
| 1.2.3 木耳多糖含量测定 | 第26-27页 |
| 1.2.4 木耳黑色素含量的测定 | 第27页 |
| 2. 结果与分析 | 第27-35页 |
| 2.1 脂肪酸添加对黑木耳生物量、胞外多糖、黑色素的影响 | 第27-28页 |
| 2.2 植物油添加对黑木耳生物量的影响 | 第28-30页 |
| 2.3 表面活性剂添加对生物量的影响 | 第30-31页 |
| 2.4 聚乙二醇对生物量的影响 | 第31-33页 |
| 2.5 醇对生物量及胞外多糖、黑色素的影响 | 第33-34页 |
| 2.6 正交分析 | 第34-35页 |
| 3. 讨论 | 第35-36页 |
| 4. 结论 | 第36-38页 |
| 第四章 以豆奶为基质的黑木耳菌发酵 | 第38-55页 |
| 1. 材料与方法 | 第39-42页 |
| 1.1 材料 | 第39-40页 |
| 1.1.1 菌株 | 第39页 |
| 1.1.2 试剂 | 第39页 |
| 1.1.3 仪器 | 第39-40页 |
| 1.2 种子培养基 | 第40页 |
| 1.3 方法 | 第40-42页 |
| 2. 结果与讨论 | 第42-53页 |
| 2.1 发酵过程菌体生物量的变化 | 第42页 |
| 2.2 发酵过程PH值的变化 | 第42-43页 |
| 2.3 发酵过程还原糖含量的变化 | 第43页 |
| 2.4 发酵过程多糖含量的变化 | 第43-44页 |
| 2.5 发酵过程总酚的含量的变化 | 第44页 |
| 2.6 发酵过程总黄酮的含量的变化 | 第44-45页 |
| 2.7 发酵过程黑色素含量的变化 | 第45页 |
| 2.8 发酵过程低聚糖含量的变化 | 第45-46页 |
| 2.9 发酵过程大豆异黄酮含量的测定 | 第46-48页 |
| 2.10 发酵过程蛋白质含量测定 | 第48-49页 |
| 2.11 发酵过程糖苷酶的活性 | 第49-50页 |
| 2.12 发酵过程酪氨酸酶活性变化 | 第50页 |
| 2.13 发酵过程中抗氧化活性的测定 | 第50-52页 |
| 2.13.1 ABTS抗氧化 | 第50-51页 |
| 2.13.2 FARP法 | 第51-52页 |
| 2.13.3 DPPH清除自由基 | 第52页 |
| 2.14 发酵过程游离氨基酸的含量变化 | 第52-53页 |
| 3. 讨论 | 第53-54页 |
| 4. 本章小结 | 第54-55页 |
| 第五章 黑木耳黑色素稳定性初步研究 | 第55-64页 |
| 1. 材料与方法 | 第55-57页 |
| 1.1 材料 | 第55页 |
| 1.2 试验试剂 | 第55页 |
| 1.3 培养基及发酵条件 | 第55页 |
| 1.4 黑色素的提取纯化 | 第55页 |
| 1.5 黑色素的溶解性 | 第55-56页 |
| 1.6 黑色素的稳定性 | 第56-57页 |
| 1.6.1 自然光照 | 第56页 |
| 1.6.2 紫外光照 | 第56页 |
| 1.6.3 黑色素在不同温度下的稳定性 | 第56页 |
| 1.6.4 苯甲酸钠对黑色素的稳定性 | 第56页 |
| 1.6.5 山梨酸钾对黑色素的稳定性 | 第56页 |
| 1.6.6 柠檬酸对黑色素的稳定性 | 第56页 |
| 1.6.7 氯化钠对黑色素的稳定性 | 第56页 |
| 1.6.8 蔗糖对黑色素的稳定性 | 第56页 |
| 1.6.9 葡萄糖对黑色素的稳定性 | 第56-57页 |
| 2. 结果与分析 | 第57-63页 |
| 2.1 溶解性 | 第57页 |
| 2.2 稳定性 | 第57-63页 |
| 2.2.1 黑色素在不同温度下的稳定性 | 第57-58页 |
| 2.2.2 黑色素在不同光照条件下的稳定性 | 第58-59页 |
| 2.2.3 防腐剂对黑色素稳定性影响 | 第59-60页 |
| 2.2.4 氯化钠对黑色素稳定性 | 第60-61页 |
| 2.2.5 蔗糖对黑色素稳定性的影响 | 第61页 |
| 2.2.6 维生素C对黑色素稳定性的影响 | 第61-62页 |
| 2.2.7 葡萄糖对黑色素稳定性的影响 | 第62页 |
| 2.2.8 柠檬酸对黑色素稳定性的影响 | 第62-63页 |
| 3. 讨论 | 第63页 |
| 4. 本章小结 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |
| 中英文对照及英文缩写词表 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 在校期间成果及发表论文情况 | 第71页 |