中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第11-12页 |
前言 | 第12-15页 |
研究现状、成果 | 第12-13页 |
研究目的、方法 | 第13-15页 |
一、HCC组织中NTS/IL-8 的异常活化及临床意义 | 第15-27页 |
1.1 对象和方法 | 第15-17页 |
1.1.1 病例来源 | 第15页 |
1.1.2 标本来源 | 第15-16页 |
1.1.3 免疫组织化学染色试剂 | 第16页 |
1.1.4 免疫组织化学染色 | 第16-17页 |
1.1.5 统计学处理 | 第17页 |
1.2 结果 | 第17-25页 |
1.2.1 HCC组织中NTS/IL-8 通路异常活化的表达情况 | 第17-19页 |
1.2.2 NTS/ IL-8 异常表达与HCC患者临床病理指标的相关性 | 第19-21页 |
1.2.3 NTS/IL-8 异常活化与HCC组织局部炎症的相关性 | 第21-23页 |
1.2.4 NTS/IL-8 异常活化与HCC组织EMT的相关性 | 第23-25页 |
1.3 讨论 | 第25-26页 |
1.4 小结 | 第26-27页 |
二、HCC细胞系中NTS/ IL-8 通路异常激活对EMT的影响 | 第27-42页 |
2.1 对象和方法 | 第27-34页 |
2.1.1 细胞系 | 第27页 |
2.1.2 细胞培养试剂 | 第27页 |
2.1.3 小干扰RNA转染试剂 | 第27页 |
2.1.4 细胞功能实验试剂 | 第27页 |
2.1.5 荧光实时定量PCR实验试剂 | 第27-28页 |
2.1.6 Western Blot实验试剂 | 第28页 |
2.1.7 ELISA实验试剂 | 第28页 |
2.1.8 siRNA转染 | 第28页 |
2.1.9 PCR反应 | 第28-30页 |
2.1.10 Wound healing实验 | 第30页 |
2.1.11 Transwell侵袭实验 | 第30-31页 |
2.1.12 Western Blot | 第31-33页 |
2.1.13 ELISA | 第33-34页 |
2.2 结果 | 第34-40页 |
2.2.1 细胞系的构建及验证 | 第34-36页 |
2.2.2 外源性NTS和高表达NTR1刺激HCC细胞分泌IL-8 | 第36-38页 |
2.2.3 阻断IL-8 受体后对NTS诱导HCC细胞侵袭性的影响 | 第38-39页 |
2.2.4 阻断IL-8 受体后对NTS诱导HCC细胞EMT的影响 | 第39-40页 |
2.3 讨论 | 第40-41页 |
2.4 小结 | 第41-42页 |
三、NTS/ IL-8 通路调控HCC细胞EMT的机制 | 第42-56页 |
3.1 对象和方法 | 第42-45页 |
3.1.1 细胞系 | 第42页 |
3.1.2 细胞培养试剂 | 第42页 |
3.1.3 细胞转导信号通路阻断剂 | 第42页 |
3.1.4 Western Blot实验试剂 | 第42-43页 |
3.1.5 核ELISA | 第43-44页 |
3.1.6 Annexin V凋亡实验 | 第44页 |
3.1.7 细胞信号阻断实验 | 第44-45页 |
3.2 结果 | 第45-52页 |
3.2.1 NTS信号刺激HCC细胞MAPK通路激活 | 第45-46页 |
3.2.2 NTS信号刺激HCC细胞中NF-κB通路激活 | 第46-48页 |
3.2.3 NTS信号不能刺激HCC细胞中PKC和PI3K通路活化 | 第48页 |
3.2.4 阻断MAPK通路和NF-KB通路后HCC细胞IL-8 分泌显著下降 | 第48-49页 |
3.2.5 阻断MAPK通路和NF-KB通路对HCC细胞凋亡的影响 | 第49-50页 |
3.2.6 阻断MAPK和NF-KB通路对HCC细胞侵袭性的影响 | 第50-52页 |
3.2.7 阻断MAPK和NF-κB通路对HCC细胞EMT的影响 | 第52页 |
3.3 讨论 | 第52-54页 |
3.4 小结 | 第54-56页 |
结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-61页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第61-62页 |
附录 | 第62-64页 |
综述 NTS/IL-8 信号通路与恶性肿瘤相关性的研究进展 | 第64-77页 |
综述参考文献 | 第69-77页 |
致谢 | 第77-78页 |
个人简历 | 第78页 |