| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-21页 |
| 1.1 紧密连接的功能 | 第13-14页 |
| 1.2 CLDNs的结构和功能 | 第14-15页 |
| 1.2.1 CLDNs的结构 | 第14页 |
| 1.2.2 CLDNs的功能 | 第14-15页 |
| 1.3 CLDNs的表达调控 | 第15-16页 |
| 1.4 CLDNs与肿瘤 | 第16-19页 |
| 1.4.1 CLDNs与卵巢癌 | 第17页 |
| 1.4.2 CLDNs与前列腺癌 | 第17-18页 |
| 1.4.3 CLDNs与乳腺癌 | 第18-19页 |
| 1.5 CLDNs与JAKs/STATs信号通路 | 第19-20页 |
| 1.6 展望与挑战 | 第20-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-24页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第21页 |
| 2.1.2 主要的试剂耗材 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要的仪器设备 | 第22-23页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第23-24页 |
| 2.1.5 引物和抗体 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-30页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第24-25页 |
| 2.2.2 RT-PCR技术检测CLDN6的表达 | 第25-26页 |
| 2.2.3 Western-Blot技术检测CLDN6的表达 | 第26-28页 |
| 2.2.4 Western-Blot技术检测p-JAK2、p-STAT3、JAK2和STAT3的表达 | 第28页 |
| 2.2.5 iCelligence实时细胞功能分析仪检测AG490对克隆组细胞的IC50值 | 第28-29页 |
| 2.2.6 Western-Blot检测AG490抑制JAK2激活的最佳作用条件 | 第29页 |
| 2.2.7 细胞划痕实验检测AG490对细胞迁移的影响 | 第29-30页 |
| 2.2.8 Transwell小室实验检测AG490对细胞侵袭的影响 | 第30页 |
| 2.2.9 Western-Blot技术检测E-cadherin和Vimentin的表达 | 第30页 |
| 2.3 统计方法 | 第30-31页 |
| 第3章 结果 | 第31-38页 |
| 3.1 克隆组细胞CLDN6表达的鉴定 | 第31页 |
| 3.2 CLDN6对MCF-7细胞EMT的影响 | 第31-32页 |
| 3.3 CLDN6对MCF-7细胞中JAK2、STAT3表达和激活的影响 | 第32-33页 |
| 3.4 AG490处理克隆组细胞的IC50值 | 第33-34页 |
| 3.5 AG490抑制JAK2激活的最适浓度 | 第34页 |
| 3.6 AG490抑制JAK2激活的最适时间 | 第34-35页 |
| 3.7 AG490对细胞迁移的影响 | 第35-36页 |
| 3.8 AG490对细胞侵袭的影响 | 第36页 |
| 3.9 AG490对EMT的影响 | 第36-38页 |
| 第4章 讨论 | 第38-41页 |
| 4.1 序言 | 第38页 |
| 4.2 CLDN6抑制MCF-7细胞的迁移、侵袭及EMT | 第38-39页 |
| 4.3 CLDN6抑制MCF-7细胞迁移和侵袭作用的机制 | 第39-41页 |
| 第5章 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| 作者简介 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
