钛表面含双重炎性因子复合涂层及其调控巨噬细胞极化
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第—章 绪论 | 第13-31页 |
| 1.1 生物医用材料简介 | 第13页 |
| 1.2 骨生物材料现状 | 第13-14页 |
| 1.3 医用钛及钛合金 | 第14-16页 |
| 1.3.1 钛及钛合金简介 | 第14-15页 |
| 1.3.2 钛及钛合金表面改性 | 第15-16页 |
| 1.4 TiO_2纳米管 | 第16-18页 |
| 1.4.1 TiO_2纳米管的制备 | 第16-17页 |
| 1.4.2 TiO_2纳米管的现状和前景 | 第17-18页 |
| 1.5 医用水凝胶研究现状 | 第18-22页 |
| 1.5.1 壳聚糖简介 | 第18-19页 |
| 1.5.2 交联剂的选用——京尼平 | 第19-22页 |
| 1.6 免疫细胞与植入体的相互作用 | 第22-25页 |
| 1.7 免疫调节材料 | 第25-28页 |
| 1.7.1 化学信号调控M1/M2巨噬细胞 | 第26-27页 |
| 1.7.2 物理信号调控M1/M2巨噬细胞 | 第27-28页 |
| 1.8 本文研究目的、研究内容和技术路线 | 第28-31页 |
| 1.8.1 研究意义 | 第28页 |
| 1.8.2 研究目的 | 第28-29页 |
| 1.8.3 研究内容 | 第29-30页 |
| 1.8.4 技术路线 | 第30-31页 |
| 第二章 钛表面含双炎性因子凝胶涂层的制备及表征 | 第31-42页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验部分 | 第31-37页 |
| 2.2.1 实验试剂与仪器 | 第31-33页 |
| 2.2.2 样品的制备 | 第33-35页 |
| 2.2.3 体外降解实验 | 第35页 |
| 2.2.4 体外释放实验 | 第35-36页 |
| 2.2.6 样品的表征 | 第36-37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-40页 |
| 2.3.1 SEM检测 | 第37-38页 |
| 2.3.2 FTIR检测 | 第38-39页 |
| 2.3.3 体外降解结果 | 第39-40页 |
| 2.3.4 体外释放结果 | 第40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 凝胶涂层细胞相容性评价 | 第42-48页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 材料和方法 | 第42-46页 |
| 3.2.1 实验材料的准备 | 第42-43页 |
| 3.2.2 细胞培养实验 | 第43-44页 |
| 3.2.3 样品的表征 | 第44-45页 |
| 3.2.4 统计学分析 | 第45-46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-47页 |
| 3.3.1 细胞增殖能力测试 | 第46页 |
| 3.3.2 活/死细胞荧光染色 | 第46-47页 |
| 3.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 含炎性因子凝胶涂层对巨噬细胞的调控 | 第48-57页 |
| 4.1 引言 | 第48页 |
| 4.2 材料与方法 | 第48-51页 |
| 4.2.1 材料的准备 | 第48-49页 |
| 4.2.2 细胞培养实验 | 第49页 |
| 4.2.3 巨噬细胞的形貌表征 | 第49-50页 |
| 4.2.4 巨噬细胞相关炎性因子分泌检测 | 第50页 |
| 4.2.5 巨噬细胞炎症基因的检测 | 第50-51页 |
| 4.2.6 统计学分析 | 第51页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第51-56页 |
| 4.3.1 巨噬细胞的形貌 | 第51-54页 |
| 4.3.2 巨噬细胞相关炎性因子分泌 | 第54-55页 |
| 4.3.3 巨噬细胞炎性基因的表达 | 第55-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 本文研究展望 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第71页 |
