| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 第一部分 文献综述 | 第17-53页 |
| 1 研究背景 | 第17-18页 |
| 2 AD的概述 | 第18-19页 |
| 2.1 AD的分型 | 第18页 |
| 2.2 AD的病理特征 | 第18-19页 |
| 3 Aβ与AD病理机制的关系 | 第19-37页 |
| 3.1 AD的病理学基础 | 第19页 |
| 3.2 APP基因家族成员的概述 | 第19-21页 |
| 3.3 APP的蛋白水解酶 | 第21-26页 |
| 3.4 Aβ的神经毒性及其导致AD的生物学机制 | 第26-27页 |
| 3.5 Aβ生成的“APP-Aβ-AICD”通路 | 第27-28页 |
| 3.6 脑内Aβ清除的途径 | 第28-37页 |
| 4 AD动物模型的研究 | 第37-40页 |
| 4.1 AD单转基因小鼠 | 第38页 |
| 4.2 AD双转基因小鼠 | 第38-39页 |
| 4.3 AD三转基因小鼠 | 第39-40页 |
| 5 运动对AD影响的研究进展 | 第40-51页 |
| 5.1 运动对AD实验动物学习记忆能力的影响 | 第40-41页 |
| 5.2 运动对脑Aβ调节的研究 | 第41-44页 |
| 5.3 运动对脑内tau蛋白异常磷酸化的调节 | 第44-45页 |
| 5.4 运动对AD影响的人体试验研究 | 第45-47页 |
| 5.5 运动干预对AD影响的其他可能性生物学机制 | 第47-51页 |
| 6 小结 | 第51-53页 |
| 第二部分 研究报告 | 第53-140页 |
| 前言 | 第53-55页 |
| 研究一：自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠学习记忆能力的影响 | 第55-79页 |
| 1 材料和方法 | 第55-58页 |
| 1.1 实验动物 | 第55-56页 |
| 1.2 动物分组及运动方案 | 第56页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第56-57页 |
| 1.4 行为学测试实验 | 第57页 |
| 1.5 数据统计 | 第57-58页 |
| 2 实验结果 | 第58-71页 |
| 2.1 跑轮运动距离统计 | 第58-59页 |
| 2.2 实验前后各组小鼠体重的变化 | 第59页 |
| 2.3 各组小鼠定位航行实验结果比较 | 第59-68页 |
| 2.4 各组小鼠空间探索实验（撤除平台后）结果的比较 | 第68-71页 |
| 3 分析与讨论 | 第71-78页 |
| 3.1 选取APP/PS1转基因AD小鼠模型的依据 | 第71-73页 |
| 3.2 跑轮运动干预对APP/PS1转基因AD小鼠体重的影响 | 第73页 |
| 3.3 APP/PS1转基因AD小鼠与野生型小鼠跑轮运动距离的对比分析 | 第73-74页 |
| 3.4 自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠学习记忆能力的影响 | 第74-78页 |
| 4 结论 | 第78-79页 |
| 研究二：自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马神经因子的影响 | 第79-89页 |
| 1 实验材料和方法 | 第79-84页 |
| 1.1 实验动物 | 第79页 |
| 1.2 实验动物分组及运动训练模式 | 第79页 |
| 1.3 主要试剂、实验仪器 | 第79-80页 |
| 1.4 主要实验试剂和耗材 | 第80页 |
| 1.5 目的基因转录水平的检测 | 第80-83页 |
| 1.6 数据统计 | 第83-84页 |
| 2 实验结果 | 第84-85页 |
| 2.1 自主跑轮运动对APP/PS1转基因小鼠海马神经因子的调节 | 第84页 |
| 2.2 自主跑轮运动对APIVPS1转基因小鼠海马神经因子的调节 | 第84页 |
| 2.3 自主跑轮运动对APP/PS1转基因小鼠海马神经因子的调节 | 第84-85页 |
| 3 分析与讨论 | 第85-88页 |
| 4 结论 | 第88-89页 |
| 研究三：自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马Aβ生成的影响 | 第89-108页 |
| 1 实验材料和方法 | 第89-96页 |
| 1.1 实验动物 | 第89页 |
| 1.2 实验动物分组及运动训练模式 | 第89页 |
| 1.3 主要试剂、实验仪器 | 第89-91页 |
| 1.4 目的蛋白检测实验 | 第91-95页 |
| 1.5 数据统计 | 第95-96页 |
| 2 实验结果 | 第96-102页 |
| 2.1 自主跑轮运动对APP/PS1转基因小鼠海马APP水平的调节 | 第96-97页 |
| 2.2 自主跑轮运动对APP/PS1转基因小鼠海马内三种APP分泌酶水平的调节 | 第97-102页 |
| 3 分析与讨论 | 第102-107页 |
| 3.1 自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马APP蛋白表达的影响 | 第102-103页 |
| 3.2 自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马三种分泌酶的影响 | 第103-107页 |
| 4 结论 | 第107-108页 |
| 研究四：自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马Aβ清除的影响 | 第108-132页 |
| 1 实验材料和方法 | 第108-112页 |
| 1.1 实验动物 | 第108-109页 |
| 1.2 实验动物分组及运动干预模式 | 第109页 |
| 1.3 主要试剂和实验仪器 | 第109-110页 |
| 1.4 实验步骤 | 第110-112页 |
| 1.5 数据统计 | 第112页 |
| 2 实验结果 | 第112-123页 |
| 2.1 自主跑轮运动对APP/PS1转基因小鼠海马Aβ40和Aβ42蛋白表达的调节 | 第112-113页 |
| 2.2 自主跑轮运动对APP/PS1转基因小鼠海马Aβ降解酶表达水平的调节 | 第113-120页 |
| 2.3 自主跑轮运动对APP/PS1转基因小鼠海马Aβ转运蛋白的调节 | 第120-123页 |
| 3 分析与讨论 | 第123-131页 |
| 3.1 自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马Aβ40和Aβ42的影响 | 第123-125页 |
| 3.2 自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马Aβ降解酶的影响 | 第125-129页 |
| 3.3 自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马Aβ转运蛋白的影响 | 第129-131页 |
| 4 结论 | 第131-132页 |
| 研究五：自主跑轮运动对APP/PS1转基因AD小鼠海马Aβ沉积的影响 | 第132-140页 |
| 1 实验材料和方法 | 第132-135页 |
| 1.1 实验动物 | 第132页 |
| 1.2 实验动物分组及运动训练模式 | 第132页 |
| 1.3 实验动物脑组织取材 | 第132-133页 |
| 1.4 主要试剂、实验仪器 | 第133-134页 |
| 1.5 免疫组织化学实验 | 第134页 |
| 1.6 刚果红染色实验(Highman甲醇刚果红染色法) | 第134-135页 |
| 1.7 数据统计 | 第135页 |
| 2 实验结果 | 第135-137页 |
| 2.1 各组小鼠海马刚果红染色实验结果 | 第135-136页 |
| 2.2 各组小鼠海马免疫组织化学实验结果 | 第136-137页 |
| 3 分析与讨论 | 第137-139页 |
| 4 结论 | 第139-140页 |
| 第三部分 综合分析 | 第140-144页 |
| 第四部分 研究总结 | 第144-147页 |
| 1 主要结果与结论 | 第144-145页 |
| 2 本研究的特色之处 | 第145页 |
| 3 本研究的不足之处 | 第145-146页 |
| 4 研究展望 | 第146-147页 |
| 附录：缩略词索引表 | 第147-149页 |
| 参考文献 | 第149-172页 |
| 后记 | 第172-174页 |
| 攻读博士学位期间的学术成果 | 第174页 |
