摘要 | 第6-8页 |
第一章 前言 | 第8-18页 |
1. MicroRNA简介 | 第8-10页 |
1.1 miRNA的生物合成 | 第8页 |
1.2 植物miRNA的调控机制 | 第8-10页 |
2. 植物miRNA的功能多样性 | 第10-15页 |
2.1 miRNA参与植物生长发育 | 第10-13页 |
2.2 miRNA参与信号传导过程 | 第13-14页 |
2.3 miRNA参与植物疾病过程 | 第14-15页 |
2.4 miRNA参与植物逆境胁迫的响应 | 第15页 |
3. miR165/166及其靶基因HD-ZIPⅢ的研究进展 | 第15-16页 |
4. miRNA减低表达新方法—STTM技术 | 第16-17页 |
5. 研究目的和意义 | 第17-18页 |
第二章 试验材料与方法 | 第18-25页 |
1. 试验材料、仪器及试剂 | 第18-19页 |
1.1 材料及培养条件 | 第18页 |
1.2 试验仪器及试剂 | 第18页 |
1.3 主要溶液及试剂的配制 | 第18-19页 |
2 试验方法 | 第19-25页 |
2.1 STTM165/166转基因番茄的筛选及PCR鉴定 | 第19页 |
2.2 番茄不同组织中miR165/166及其靶基因表达的qRT-PCR检测 | 第19-22页 |
2.3 番茄幼茎石蜡切片 | 第22页 |
2.4 拟南芥干旱胁迫 | 第22-24页 |
2.5 拟南芥盐胁迫 | 第24-25页 |
第三章 结果与分析 | 第25-34页 |
1. 番茄miR165/166组织特异性表达分析 | 第25页 |
2. STTM165/166转基因番茄的PCR鉴定 | 第25-26页 |
3. 转基因番茄中STTM165/166、miR165/166及其靶基因的表达分析 | 第26-27页 |
4. STTM165/166转基因番茄的表型 | 第27-28页 |
4.1 STTM165/166对番茄植株生长发育的影响 | 第27页 |
4.2 STTM165/166对番茄维管组织极性的影响 | 第27-28页 |
5. STTM165/166转基因拟南芥对逆境胁迫的响应 | 第28-34页 |
5.1. miR165/166及其靶基因启动子区逆境胁迫相关顺式作用元件 | 第28-29页 |
5.2 PEG胁迫对miR165/166及其靶基因表达的影响 | 第29-30页 |
5.3 PEG胁迫对POD酶活性及MDA含量的影响 | 第30-31页 |
5.5 土壤干旱胁迫对拟南芥表型及叶绿素含量的影响 | 第31-32页 |
5.6 盐胁迫对拟南芥表型的影响 | 第32-34页 |
第四章 讨论 | 第34-37页 |
1 miR165/166在番茄种的表达特性 | 第34页 |
2 miR165/166及其靶基因对植物形态建成的调控 | 第34-35页 |
3 miR165/166在植物逆境胁迫响应中的作用 | 第35-37页 |
第五章 结论 | 第37-38页 |
参考文献 | 第38-46页 |
Abstract | 第46-47页 |
致谢 | 第48页 |