| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-30页 |
| ·花粉-雌蕊互作 | 第12-16页 |
| ·花粉与柱头结构 | 第13-14页 |
| ·花粉粘附和水合 | 第14-15页 |
| ·花粉萌发 | 第15页 |
| ·花粉管入侵柱头 | 第15-16页 |
| ·花粉管生长和引导 | 第16-22页 |
| ·孢子体组织在花粉管引导中的作用 | 第16-20页 |
| ·血蓝质 | 第16页 |
| ·GABA | 第16-17页 |
| ·花柱道特异的阿拉伯半乳糖蛋白（TTS） | 第17页 |
| ·其它小分子物质 | 第17-19页 |
| ·柱头表面浸出液 | 第19-20页 |
| ·受体激酶 | 第20页 |
| ·珠被组织 | 第20页 |
| ·配子体细胞在花粉管引导中的作用 | 第20-22页 |
| ·珠柄引导 | 第21页 |
| ·珠孔的引导 | 第21-22页 |
| ·精子释放 | 第22页 |
| ·类黄酮 | 第22-26页 |
| ·类黄酮的分类 | 第22页 |
| ·类黄酮合成途径 | 第22-23页 |
| ·类黄酮化合物的功能 | 第23-26页 |
| ·类黄酮对植物生殖发育的作用 | 第23-25页 |
| ·类黄酮介导生长素运输 | 第25页 |
| ·类黄酮的其他作用 | 第25-26页 |
| ·花青素 | 第26-28页 |
| ·花青素的分类 | 第26页 |
| ·花青素的合成途径 | 第26-27页 |
| ·花青素的功能 | 第27-28页 |
| ·影响花青素合成的因素 | 第28页 |
| ·光 | 第28页 |
| ·蔗糖 | 第28页 |
| ·氮和茉莉酮酸 | 第28页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第28-30页 |
| 2 材料与方法 | 第30-42页 |
| ·实验材料 | 第30-32页 |
| ·植物材料及生长条件 | 第30页 |
| ·菌株与质粒 | 第30页 |
| ·酶与各种生化试剂 | 第30页 |
| ·各种缓冲液及培养基配方 | 第30-31页 |
| ·实验中所用到的引物及序列 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32-42页 |
| ·构建拟南芥和玉米GECN模型 | 第32页 |
| ·植物代谢途径原始数据的下载 | 第32页 |
| ·构建GECN模型步骤 | 第32页 |
| ·pROKII表达载体的改造 | 第32-35页 |
| ·PCR引物设计 | 第32页 |
| ·PCR扩增SRK启动子 | 第32-33页 |
| ·目的片段与克隆载体的连接 | 第33页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第33-34页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的转化（热击法） | 第34页 |
| ·大肠杆菌的菌落PCR鉴定 | 第34-35页 |
| ·DNA测序 | 第35页 |
| ·质粒DNA的提取 | 第35页 |
| ·目的片段和质粒DNA的酶切与回收 | 第35页 |
| ·目的DNA片段与质粒DNA片段的连接 | 第35页 |
| ·Artificial microRNA沉默基因表达载体的构建 | 第35-38页 |
| ·GV3101农杆菌感受态制备 | 第38页 |
| ·电转法转化农杆菌 | 第38-39页 |
| ·拟南芥的栽培与转化 | 第39页 |
| ·拟南芥的栽培 | 第39页 |
| ·拟南芥的转化 | 第39页 |
| ·筛选amiRNA植株 | 第39页 |
| ·鉴定amiRNA植株 | 第39-40页 |
| ·植物总DNA的提取 | 第39-40页 |
| ·AmiRNA转基因植株PCR鉴定 | 第40页 |
| ·植物总RNA的提取 | 第40页 |
| ·组织定位和亚细胞定位 | 第40-41页 |
| ·GUS染色 | 第41页 |
| ·激光共聚焦扫描显微镜的观察和图像处理 | 第41页 |
| ·胚透明实验 | 第41页 |
| ·花粉萌发实验 | 第41页 |
| ·类黄酮的提取 | 第41-42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-64页 |
| ·玉米与拟南芥雌蕊组织授粉后优势代谢途径分析 | 第42-43页 |
| ·授粉前后玉米silk和拟南芥雌蕊RNA-Seq数据GECN分析 | 第42页 |
| ·授粉后雌蕊优势代谢途径相关酶的分布 | 第42-43页 |
| ·授粉后雌蕊优势代谢途径及其相应的酶和基因的数目 | 第43-52页 |
| ·谷氨酸降解途径（Glutamate degradation） | 第45-46页 |
| ·淀粉合成途径（Starch biosynthesis） | 第46-48页 |
| ·类黄酮合成途径（Flavonoid biosynthesis） | 第48-51页 |
| ·黄酮和异黄酮合成途径 | 第48-49页 |
| ·黄酮醇合成途径 | 第49-50页 |
| ·花色素和原花色素合成途径 | 第50-51页 |
| ·花青素合成途径（Anthocyanin biosynthesis） | 第51-52页 |
| ·授粉后拟南芥雌蕊优势表达基因 | 第52-53页 |
| ·类黄酮对花粉管生长的影响 | 第53-64页 |
| ·类黄酮促进花粉管的体内生长 | 第53-60页 |
| ·UF3GT、UGT75C1、ANS和LAR基因 | 第53-54页 |
| ·UF3GT、UGT75C1、ANS和LAR组织表达分析 | 第54页 |
| ·UF3GT、UGT75C1、ANS和LAR亚细胞定位分析 | 第54-55页 |
| ·UF3GT、UGT75C1、ANS和LAR artificial RNA载体的构建 | 第55-56页 |
| ·UF3GT、UGT75C1、ANS和LAR amiRNA转基因植株的鉴定 | 第56-57页 |
| ·AmiRNA转基因植株体内花粉管生长延迟 | 第57-59页 |
| ·AmiRNA转基因植株雌蕊类黄酮的积累量降低 | 第59页 |
| ·AmiRNA转基因植株结实率正常 | 第59-60页 |
| ·一定浓度的类黄酮促进花粉管的体外生长 | 第60-64页 |
| ·体外施加类黄酮花粉的萌发和花粉管生长受到影响 | 第60-61页 |
| ·类黄酮对体外花粉萌发和花粉管生长的功能分析 | 第61-64页 |
| 4 讨论 | 第64-67页 |
| 5 结论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
