| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 1. 前言 | 第11-23页 |
| ·马铃薯概述 | 第11-12页 |
| ·马铃薯 | 第11页 |
| ·马铃薯产业 | 第11-12页 |
| ·马铃薯块茎 | 第12-15页 |
| ·块茎的形成 | 第12页 |
| ·影响块茎形成的因素 | 第12-15页 |
| ·光周期调控的分子水平研究 | 第15-20页 |
| ·光周期调控拟南芥开花 | 第15-18页 |
| ·光周期调控马铃薯结薯 | 第18-20页 |
| ·课题的提出及意义 | 第20-23页 |
| 2. 材料与方法 | 第23-30页 |
| ·试验材料 | 第23-24页 |
| ·植物材料 | 第23页 |
| ·菌种和质粒 | 第23页 |
| ·实验试剂 | 第23-24页 |
| ·方法 | 第24-30页 |
| ·材料处理 | 第24页 |
| ·马铃薯叶片总RNA提取及反转录 | 第24-25页 |
| ·Real-time quantitative RT-PCR(qPCR)定量检测 | 第25-26页 |
| ·AT克隆 | 第26页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞制备 | 第26页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞转化 | 第26-27页 |
| ·质粒DNA小量提取 | 第27页 |
| ·质粒双酶切反应 | 第27页 |
| ·酶切的方法构建RNAi干涉载体 | 第27-28页 |
| ·电激法转化农杆菌 | 第28页 |
| ·农杆菌介导的马铃薯试管薯的遗传转化 | 第28-29页 |
| ·植物基因组DNA小量提取 | 第29-30页 |
| 3. 结果与分析 | 第30-49页 |
| ·根据DGE测序结果的基因信息分析 | 第30-33页 |
| ·候选基因表达的定量分析及筛选 | 第33-38页 |
| ·StPIF3、StGI,StTOC1基因cDNA克隆 | 第38-39页 |
| ·干涉载体的构建 | 第39-42页 |
| ·遗传转化及转化植株的PCR检测 | 第42-43页 |
| ·转基因株系的基因转录水平检测 | 第43-44页 |
| ·目的基因干涉效果检测 | 第43-44页 |
| ·下游基因转录水平检测 | 第44页 |
| ·E26转化体系建立 | 第44-49页 |
| 4. 讨论 | 第49-54页 |
| ·马铃薯中光敏感基因的筛选 | 第49-51页 |
| ·光敏感基因转录水平筛选 | 第49-50页 |
| ·StPIF3、StGI,StTOC1序列比对 | 第50-51页 |
| ·转基因株系的基因转录水平检测 | 第51-52页 |
| ·E26转化体系的建立 | 第52-53页 |
| ·研究展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 附录 | 第59-67页 |
| 附录一 StPIF3基因在E20、E26、E109中序列比对 | 第59-61页 |
| 附录二 StGI基因在E20、E26、E109中序列比对 | 第61-63页 |
| 附录三 StTOC1基因在E20、E26、E109中序列比对 | 第63-65页 |
| 附录四 StPIF3基因在E20、E26、E109中氨基酸比对 | 第65页 |
| 附录五 StTOC1基因在E20、E26、E109中氨基酸比对 | 第65-66页 |
| 附录六 攻读硕士学位期间发表论文 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
