| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第9-19页 |
| ·研究的目的和意义 | 第9页 |
| ·子叶节组培研究进展 | 第9-10页 |
| ·雌雄异株植物性别决定研究进展 | 第10-12页 |
| ·性染色体与植物性别的决定 | 第10-11页 |
| ·激素在植物性别发育中的作用 | 第11页 |
| ·环境因子对植物性别的影响 | 第11-12页 |
| ·雌雄异株植物性别鉴定方法概述 | 第12-15页 |
| ·生理生化差异在性别鉴定中的应用 | 第12页 |
| ·同工酶在植物性别鉴定中的应用 | 第12-13页 |
| ·分子标记在植物性别鉴定中的应用 | 第13-15页 |
| ·黄连木研究概况 | 第15-16页 |
| ·研究的目的和意义 | 第16-19页 |
| ·研究意义 | 第16-17页 |
| ·试验内容及流程 | 第17-19页 |
| 第2章 黄连木子叶节组培快繁 | 第19-35页 |
| ·前言 | 第19页 |
| ·材料与方法 | 第19-20页 |
| ·试验材料 | 第19页 |
| ·仪器设备 | 第19页 |
| ·主要试剂及药品 | 第19-20页 |
| ·试验过程 | 第20-23页 |
| ·试验设计 | 第20页 |
| ·试验方法 | 第20-23页 |
| ·统计方法 | 第23页 |
| ·结果与分析 | 第23-32页 |
| ·子叶节的获得 | 第23-24页 |
| ·丛生芽的诱导 | 第24-26页 |
| ·增殖培养 | 第26-28页 |
| ·生根培养 | 第28-32页 |
| ·讨论 | 第32-34页 |
| ·结论 | 第34-35页 |
| 第3章 黄连木雌雄株同工酶性别鉴定研究 | 第35-47页 |
| ·前言 | 第35页 |
| ·材料 | 第35-37页 |
| ·试验材料及来源 | 第35-36页 |
| ·试验设备 | 第36页 |
| ·药品及试剂配制 | 第36-37页 |
| ·试验方法 | 第37-38页 |
| ·酶液的制备 | 第37页 |
| ·凝胶制备 | 第37-38页 |
| ·加样 | 第38页 |
| ·电泳及结果检测 | 第38页 |
| ·染色与固定 | 第38-39页 |
| ·酯酶的染色 | 第38-39页 |
| ·多酚氧化酶染色 | 第39页 |
| ·过氧化物酶的染色 | 第39页 |
| ·酶谱带迁移率(Rf)计算 | 第39页 |
| ·结果与分析 | 第39-45页 |
| ·酯酶同工酶结果与分析 | 第39-41页 |
| ·多酚氧化酶同工酶结果与分析 | 第41-44页 |
| ·过氧化物酶同工酶结果与分析 | 第44-45页 |
| ·结论与讨论 | 第45-47页 |
| 第4章 黄连木雌雄株 RAPD 标记研究 | 第47-63页 |
| ·本试验的技术路线 | 第47页 |
| ·试验材料与仪器设备 | 第47页 |
| ·试验材料 | 第47页 |
| ·试剂及药品 | 第47页 |
| ·试验方法 | 第47-51页 |
| ·改良CTAB 法提取黄连木叶片基因组DNA | 第47-48页 |
| ·DNA 纯度及浓度检测 | 第48页 |
| ·RAPD 反应体系优化 | 第48-49页 |
| ·200 条RAPD 随机引物的筛选 | 第49页 |
| ·特异片段的回收 | 第49页 |
| ·DNA 克隆 | 第49-50页 |
| ·感受态E.coli DH5a 细胞制备 | 第50页 |
| ·连接产物的转化 | 第50-51页 |
| ·蓝白斑菌落筛选 | 第51页 |
| ·阳性克隆检测及测序 | 第51页 |
| ·SCAR 引物的设计 | 第51页 |
| ·结果与分析 | 第51-59页 |
| ·黄连木叶片基因组 DNA 的提取 | 第51-53页 |
| ·RAPD-PCR 反应体系的优化 | 第53-57页 |
| ·RAPD 特异引物的筛选 | 第57-59页 |
| ·黄连木特异片段的克隆与测序 | 第59页 |
| ·RAPD 标记转化SCAR 标记 | 第59-60页 |
| ·SCAR 引物在植物性别鉴定中的验证 | 第60-61页 |
| ·小结与讨论 | 第61-63页 |
| 第5章 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 附录 黄连木组培图片和 RAPD 特异引物测序结果 | 第72-84页 |
| 1. 黄连木组培图片 | 第72-75页 |
| 2. RAPD 特异引物测序结果 | 第75-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第85页 |