| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 缩写词 | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第14-24页 |
| ·逆境胁迫对植物生长的影响 | 第14-15页 |
| ·ROS 的产生以及对植物生长的影响 | 第15-16页 |
| ·植物清除ROS 的机制 | 第16-18页 |
| ·ROS 在植物信号传递中的作用 | 第18-20页 |
| ·ROS 介导的信号传导通路 | 第20-22页 |
| ·植物对ROS 的感知与传导 | 第20-21页 |
| ·ROS 信号通路中相关基因的表达 | 第21-22页 |
| ·立题依据 | 第22-24页 |
| 2 材料和方法 | 第24-36页 |
| ·实验材料 | 第24页 |
| ·实验试剂 | 第24页 |
| ·实验溶液 | 第24-26页 |
| ·常用溶液 | 第24-25页 |
| ·分离拟南芥叶片原生质体所用溶液 | 第25页 |
| ·拟南芥原生质体瞬时转化所用溶液 | 第25-26页 |
| ·实验所用引物 | 第26-27页 |
| ·构建载体所用引物 | 第26页 |
| ·纯合体鉴定所用引物 | 第26页 |
| ·RT-PCR 所用引物 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27-36页 |
| ·拟南芥的种植 | 第27页 |
| ·拟南芥总的RNA 提取 | 第27页 |
| ·反转录制备拟南芥cDNA | 第27-28页 |
| ·半定量RT-PCR 检测相关基因表达 | 第28页 |
| ·DNA 的琼脂糖凝胶电泳 | 第28页 |
| ·基因扩增与酶切反应 | 第28-29页 |
| ·凝胶电泳产物的回收和纯化 | 第29页 |
| ·重组质粒载体的构建 | 第29-30页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第30页 |
| ·质粒DNA 的提取 | 第30-31页 |
| ·重组质粒的鉴定 | 第31页 |
| ·拟南芥原生质体的分离 | 第31-32页 |
| ·PEG 转化 | 第32页 |
| ·原生质体细胞的DAPI 染色 | 第32页 |
| ·杂交实验 | 第32-33页 |
| ·拟南芥基因组DNA 的提取 | 第33页 |
| ·T-DNA 插入纯合体筛选方法 | 第33-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-52页 |
| ·D0S1 与GPX3 的体内相互作用研究(BiFC) | 第36-38页 |
| ·pSPYCE-D0S1; pSPYNE-GPX3 重组载体的构建 | 第36-37页 |
| ·D0S1 与GPX3 体内相互作用 | 第37-38页 |
| ·D0S1 与RRTF1 的体内相互作用研究(BiFC) | 第38-42页 |
| ·pSPYNE-RRTF1 重组载体的构建 | 第38-39页 |
| ·D0S1 与RRTF1 体内相互作用 | 第39-41页 |
| ·在缺失GPX3 情况下的D0S1 与RRTF1 体内相互作用 | 第41-42页 |
| ·GPX3 对于D0S1 在氧化胁迫下跨膜运动的影响 | 第42-47页 |
| ·gpx3-D0S1::GFP 植株的构建和筛选 | 第42-43页 |
| ·gpx3-D0S1::GFP 与WT-D0S1::GFP 在H202 处理下的D0S1 跨膜运动对比分析 | 第43-45页 |
| ·gpx3-D0S1::GFP 与WT-D0S1::GFP 在ABA 处理下的D0S1 跨膜运动对比分析 | 第45-47页 |
| ·RRTF1 对于 DOS1 在氧化胁迫下跨膜运动的影响 | 第47-52页 |
| ·rrtf1-D0S1::GFP 植株的构建和筛选 | 第47-48页 |
| ·rrtf1-D0S1::GFP 与WT-D0S1::GFP 在H202 和ABA 处理下的DOS1跨膜运动对比分析 | 第48-52页 |
| 4 讨论 | 第52-56页 |
| ·D0S1 与GPX3 的相互作用 | 第52页 |
| ·D0S1 与RRTF1 的相互作用 | 第52页 |
| ·GPX3 与氧化胁迫下D0S1 跨膜运动之间的关系 | 第52-53页 |
| ·RRTF1 与氧化胁迫下D0S1 跨膜运动之间的关系 | 第53-56页 |
| 5 结论 | 第56-58页 |
| 6 参考文献 | 第58-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
