| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-17页 |
| 第1章 绪论 | 第17-38页 |
| ·胰岛 B 细胞与 2 型糖尿病 | 第17-23页 |
| ·胰岛 B 细胞进行性损伤分期 | 第17-18页 |
| ·影响胰岛 B 细胞功能的主要因素 | 第18-23页 |
| ·糖毒性作用 | 第18-20页 |
| ·脂毒性作用 | 第20-22页 |
| ·遗传因素 | 第22-23页 |
| ·胰岛 B 细胞胰岛素信号传导通路 | 第23-31页 |
| ·IR-IRS-PI3K 途径 | 第23-27页 |
| ·胰岛素受体 | 第23-24页 |
| ·胰岛素受体底物蛋白家族 | 第24-26页 |
| ·磷脂酰肌醇 3 激酶 | 第26-27页 |
| ·PI3K 下游信号的调节 | 第27-31页 |
| ·蛋白激酶 B | 第27-29页 |
| ·Forkhead / FoxO 与 PDX-1 | 第29-31页 |
| ·五味子化学成分及其药理毒理学研究进展 | 第31-38页 |
| ·五味子的化学成分 | 第31-33页 |
| ·木脂素 | 第31-32页 |
| ·五味子多糖 | 第32页 |
| ·挥发油 | 第32页 |
| ·脂肪酸 | 第32页 |
| ·维生素和氨基酸 | 第32-33页 |
| ·苷类 | 第33页 |
| ·五味子的药理作用 | 第33-36页 |
| ·护肝作用 | 第33页 |
| ·降血糖作用 | 第33-34页 |
| ·抗氧化、延缓衰老作用 | 第34页 |
| ·免疫调节作用 | 第34-35页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第35页 |
| ·对中枢神经系统的作用 | 第35-36页 |
| ·抑菌杀菌作用 | 第36页 |
| ·五味子的毒性研究 | 第36-38页 |
| 第2章 材料与方法 | 第38-51页 |
| ·试剂与仪器 | 第38-40页 |
| ·主要试剂 | 第38-39页 |
| ·主要仪器 | 第39-40页 |
| ·主要溶液配制 | 第40-42页 |
| ·磷酸盐缓冲液 | 第40页 |
| ·柠檬酸缓冲液 | 第40页 |
| ·STZ 配制液 | 第40页 |
| ·0.5M EDTA | 第40页 |
| ·50×TAE 溶液 | 第40-41页 |
| ·溴化乙锭 | 第41页 |
| ·DEPC 水 | 第41页 |
| ·细胞裂解液 | 第41页 |
| ·30%储备胶溶液 | 第41页 |
| ·1.5 mol/LTris-HCl | 第41页 |
| ·0.5 mol/LTris-HCl | 第41页 |
| ·10 % SDS | 第41页 |
| ·5×上样缓冲液 | 第41页 |
| ·10% APS | 第41-42页 |
| ·凝胶制备 | 第42页 |
| ·转印缓冲液 | 第42页 |
| ·封闭液 | 第42页 |
| ·TBS 洗涤液 | 第42页 |
| ·TBST 洗涤液 | 第42页 |
| ·2型糖尿病动物模型的建立 | 第42-43页 |
| ·实验动物及分组 | 第42-43页 |
| ·血清生化学指标的检测 | 第43页 |
| ·胰岛素敏感指数的计算 | 第43页 |
| ·葡萄糖耐量实验 | 第43页 |
| ·五味子油对 2 型糖尿病大鼠胰腺细胞的保护作用 | 第43-50页 |
| ·糖尿病大鼠分组及给药 | 第43-44页 |
| ·血清生化指标检测 | 第44页 |
| ·血清 NEFA/FFA 的检测 | 第44页 |
| ·大鼠胰腺组织 MDA，SOD 和 CAT 的检测 | 第44页 |
| ·大鼠胰腺组织 GSH，GSH-Px 活性测定 | 第44-45页 |
| ·大鼠胰腺形态学观察 | 第45页 |
| ·原位末端标记法（TUNEL 法）检测胰岛细胞凋亡 | 第45页 |
| ·免疫组织化学方法检测大鼠胰腺胰岛素，FoxO1 蛋白表达 | 第45-46页 |
| ·RT-PCR 检测 | 第46-49页 |
| ·胰腺组织总 RNA 提取 | 第46-47页 |
| ·逆转录反应 | 第47页 |
| ·RNA 质量鉴定 | 第47页 |
| ·PCR 反应 | 第47-48页 |
| ·制备凝胶板 | 第48页 |
| ·电泳 | 第48-49页 |
| ·Western blot 检测相关蛋白表达 | 第49-50页 |
| ·蛋白提取和定量 | 第49页 |
| ·western blot 检测蛋白表达 | 第49-50页 |
| ·统计学分析 | 第50-51页 |
| 第3章 结果 | 第51-69页 |
| ·2型糖尿病大鼠模型的建立 | 第51-53页 |
| ·高脂饮食联合 STZ（30mg/kg）两次注射对大鼠一般状态的影响 | 第51页 |
| ·建立模型大鼠成模率和血糖 | 第51-52页 |
| ·建立模型大鼠血清生化学指标变化 | 第52页 |
| ·建立模型大鼠葡萄糖耐量实验 | 第52-53页 |
| ·五味子油对 2 型糖尿病大鼠胰腺细胞的保护作用 | 第53-69页 |
| ·各组大鼠一般状态观察和空腹血糖变化 | 第53-54页 |
| ·五味子油对大鼠空腹血清胰岛素和胰岛素敏感指数的影响 | 第54页 |
| ·五味子油对大鼠腹腔注射葡萄糖耐量的影响 | 第54页 |
| ·五味子油对大鼠 TG、TC 和 NEFA 的影响 | 第54-55页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺 MDA 含量和 SOD、CAT 活性的影响 | 第55-57页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺组织 GSH 和 GSH-Px 活力的影响 | 第57-58页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺细胞形态学影响 | 第58-59页 |
| ·TUNEL 法检测胰岛细胞凋亡情况 | 第59-60页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺细胞胰岛素表达的影响 | 第60-61页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺组织 FoxO1 蛋白表达的影响 | 第61页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺组织凋亡相关因子Bax、bcl-2 和caspase3mRNA 表达的影响 | 第61-63页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺组织 Insulin 和 PDX-1 mRNA 表达的影响 | 第63-64页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺组织 IRS-2、GLUT-2 及 GCK mRNA 表达的影响 | 第64-65页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺组织凋亡相关因子Bcl-2、Bax 和caspase3 蛋白表达的影响 | 第65-66页 |
| ·五味子油对大鼠胰腺组织 IRS-2、AKT 和 p-AKT 蛋白表达的影响 | 第66-68页 |
| ·五味子油对大鼠胰岛细胞信号转导通路相关因子 PDX-1、GLUT-2 及 GCK 蛋白表达的影响 | 第68-69页 |
| 第4章 讨论 | 第69-78页 |
| ·五味子油对 2 型糖尿病大鼠糖脂代谢调节及氧化损伤的保护作用 | 第69-72页 |
| ·五味子油对 2 型糖尿病大鼠胰岛 B 细胞凋亡的保护作用 | 第72-73页 |
| ·五味子油对 2 型糖尿病大鼠胰岛 B 细胞信号传导通路相关因子的作用 | 第73-78页 |
| 第5章 结论 | 第78-79页 |
| 创新点 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-94页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及取得的科研成果 | 第94-96页 |
| 致谢 | 第96页 |
