| 中文摘要 | 第1-16页 |
| 英文摘要 | 第16-20页 |
| 第一章 绪论 | 第20-40页 |
| ·天然药物抗癌活性成分研究进展 | 第20-24页 |
| ·生物碱类活性成分 | 第20-21页 |
| ·萜类活性成分 | 第21-22页 |
| ·多糖类活性成分 | 第22页 |
| ·苷类活性成分 | 第22-23页 |
| ·蛋白类活性成分 | 第23页 |
| ·蟾蜍甾二烯类活性成分 | 第23页 |
| ·黄酮类活性成分 | 第23页 |
| ·萘醌类活性成分 | 第23-24页 |
| ·挥发油类活性成分 | 第24页 |
| ·有机酸类活性成分 | 第24页 |
| ·其它类活性成分 | 第24页 |
| ·天然药物抗肿瘤作用机制研究进展 | 第24-27页 |
| ·免疫增强作用 | 第24-25页 |
| ·诱导肿瘤细胞分化 | 第25页 |
| ·促进肿瘤细胞凋亡 | 第25页 |
| ·影响拓扑异构酶 | 第25-26页 |
| ·抗肿瘤血管生成 | 第26页 |
| ·抑制微管蛋白活性 | 第26页 |
| ·逆转多药耐药性 | 第26-27页 |
| ·抑制端粒酶活性 | 第27页 |
| ·白英的化学成分、药理作用及临床应用的研究进展 | 第27-32页 |
| ·化学成分 | 第27-30页 |
| ·药理作用 | 第30-32页 |
| ·临床应用 | 第32页 |
| ·立题依据 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-40页 |
| 第二章 白英醇提物和水提物抗肿瘤作用的研究 | 第40-55页 |
| ·实验材料 | 第40-42页 |
| ·实验方法 | 第42-43页 |
| ·细胞培养 | 第42页 |
| ·白英醇提物和水提物及含药大鼠血清对肿瘤细胞增殖的抑制作用 | 第42页 |
| ·白英醇提物和水提物最大给药量实验 | 第42-43页 |
| ·白英醇提物和水提物对小鼠S180肉瘤和小鼠H22肝癌的抑制作用 | 第43页 |
| ·实验结果 | 第43-53页 |
| ·白英醇提物和水提物对多种肿瘤细胞增殖的抑制作用 | 第43-46页 |
| ·含白英醇提物和含水提物的大鼠血清对肿瘤细胞增殖的抑制作用 | 第46-47页 |
| ·白英醇提物和水提物最大给药量实验 | 第47页 |
| ·白英醇提物和水提物对小鼠S180肉瘤和小鼠H22肝癌的抑制作用 | 第47-53页 |
| ·讨论 | 第53页 |
| ·小结 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-55页 |
| 第三章 白英有效部位的筛选及有效部位抗肿瘤作用研究 | 第55-65页 |
| ·实验材料 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55页 |
| ·白英各部位对肿瘤细胞增殖的抑制作用—抗肿瘤活性的体外筛选 | 第55页 |
| ·白英有效部位最大给药量实验 | 第55页 |
| ·白英有效部位对小鼠S180肉瘤和小鼠H22肝癌的抑制作用 | 第55页 |
| ·统计处理 | 第55页 |
| ·实验结果 | 第55-62页 |
| ·白英各部位对多种肿瘤细胞增殖的抑制作用 | 第55-56页 |
| ·白英各部位最大给药量实验 | 第56页 |
| ·白英各部位对小鼠S180肉瘤和小鼠H22肝癌的抑制作用 | 第56-62页 |
| ·讨论 | 第62-63页 |
| ·小结 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-65页 |
| 第四章 白英有效部位化学成分的研究 | 第65-100页 |
| ·活性单体的追踪分离 | 第65-68页 |
| ·有效部位的获得 | 第65页 |
| ·乙酸乙酯部位中活性成分的分离纯化 | 第65页 |
| ·正丁醇部位中活性成分的分离纯化 | 第65-68页 |
| ·化合物的结构解析 | 第68-90页 |
| ·新化合物的结构鉴定 | 第68-75页 |
| ·已知化合物的鉴定 | 第75-90页 |
| ·活性部位洗脱各部分和单体化合物对肿瘤细胞的抑制作用 | 第90-93页 |
| ·实验材料 | 第90页 |
| ·实验方法 | 第90页 |
| ·实验结果 | 第90-93页 |
| ·实验部分 | 第93-98页 |
| ·实验仪器和材料 | 第93页 |
| ·提取和分离 | 第93-94页 |
| ·化学成分的光谱数据 | 第94-98页 |
| ·讨论 | 第98页 |
| ·小结 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-100页 |
| 第五章 16-妊娠双烯醇酮诱导人宫颈癌HeLa细胞死亡机制的研究 | 第100-116页 |
| ·实验材料 | 第100-101页 |
| ·实验方法 | 第101-103页 |
| ·16-妊娠双烯醇酮对HeLa细胞生长抑制的影响 | 第101页 |
| ·细胞形态学变化的观察 | 第101页 |
| ·荧光染色 | 第101-102页 |
| ·DNA片段化电泳 | 第102页 |
| ·流式细胞分析法 | 第102页 |
| ·Caspase-3蛋白酶抑制剂对16-妊娠双烯醇酮诱导HeLa细胞死亡的影响 | 第102页 |
| ·Western印迹法 | 第102页 |
| ·数理统计 | 第102-103页 |
| ·实验结果 | 第103-110页 |
| ·16-妊娠双烯醇酮诱导HeLa细胞死亡呈明显的时间和剂量依赖性 | 第103页 |
| ·16-妊娠双烯醇酮诱导HeLa细胞凋亡的形态学变化 | 第103-104页 |
| ·DNA电泳观察 | 第104-105页 |
| ·16-妊娠双烯醇酮诱导HeLa细胞阻滞在G_0／G_1期 | 第105-108页 |
| ·caspase-3抑制剂(z-DEVD-fmk)对16-妊娠双烯醇酮诱导细胞凋亡影响 | 第108页 |
| ·16-妊娠双烯醇酮对procaspase-3及caspase-3底物ICAD、PARP的降解 | 第108-109页 |
| ·16-妊娠双烯醇酮对Bax和Bcl-2表达的影响 | 第109-110页 |
| ·讨论 | 第110-112页 |
| ·小结 | 第112-114页 |
| 参考文献 | 第114-116页 |
| 第六章 白英中薯蓣皂昔元和16-妊娠双烯醇酮定量方法的研究 | 第116-124页 |
| ·白英中薯蓣皂苷元含量测定方法的建立 | 第116-119页 |
| ·仪器、试剂与试药 | 第116页 |
| ·色谱条件与系统适用性试验 | 第116页 |
| ·对照品溶液的制备 | 第116-117页 |
| ·供试品溶液的制备 | 第117页 |
| ·标准曲线的制备 | 第117-118页 |
| ·仪器精密度试验 | 第118页 |
| ·重复性试验 | 第118页 |
| ·回收率试验 | 第118页 |
| ·样品测定 | 第118-119页 |
| ·白英中16-妊娠双烯醇酮含量测定方法的建立 | 第119-122页 |
| ·仪器、试剂与试药 | 第119页 |
| ·色谱条件与系统适用性试验 | 第119页 |
| ·检测波长的选择 | 第119页 |
| ·对照品溶液的制备 | 第119-120页 |
| ·供试品溶液的制备 | 第120页 |
| ·标准曲线的制备 | 第120-121页 |
| ·仪器精密度试验 | 第121页 |
| ·重复性试验 | 第121页 |
| ·回收率试验 | 第121-122页 |
| ·样品测定 | 第122页 |
| ·讨论 | 第122页 |
| ·小结 | 第122-123页 |
| 参考文献 | 第123-124页 |
| 结论 | 第124-125页 |
| 缩略语 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
| 个人简历 | 第127-128页 |
| 附图 | 第128-145页 |
