| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-29页 |
| ·微生物多糖概述 | 第15页 |
| ·几种粘多糖介绍 | 第15-18页 |
| ·透明质酸 | 第16页 |
| ·甲壳素和壳聚糖 | 第16-17页 |
| ·硫酸软骨素 | 第17页 |
| ·肝素 | 第17-18页 |
| ·粘多糖的发酵制备 | 第18-21页 |
| ·菌种的选育 | 第18页 |
| ·粘多糖的发酵 | 第18-19页 |
| ·粘多糖的分离纯化 | 第19-21页 |
| ·粘多糖结构及含量的测定 | 第21-24页 |
| ·粘多糖的含量分析 | 第22页 |
| ·粘多糖相对分子质量测定 | 第22页 |
| ·杂质的含量测定 | 第22-23页 |
| ·粘多糖的结构测定 | 第23-24页 |
| ·粘多糖合成相关基因的克隆研究 | 第24-27页 |
| ·实验室前期研究成果 | 第27-28页 |
| ·本课题的主要研究工作 | 第28-29页 |
| 第二章 粘多糖 A 发酵条件的优化 | 第29-45页 |
| ·前言 | 第29页 |
| ·实验材料 | 第29-31页 |
| ·菌种 | 第29页 |
| ·实验仪器 | 第29-30页 |
| ·实验药品 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-36页 |
| ·菌种活化 | 第31-32页 |
| ·发酵温度的优化 | 第32-33页 |
| ·摇瓶发酵转速的优化 | 第33页 |
| ·培养基初始 pH 的优化 | 第33页 |
| ·培养基成分的正交优化 | 第33-35页 |
| ·粘多糖 A 的扩大发酵 | 第35-36页 |
| ·实验结果与讨论 | 第36-44页 |
| ·发酵温度的优化结果 | 第36-37页 |
| ·摇瓶发酵转速的优化结果 | 第37页 |
| ·培养基初始 pH 的优化结果 | 第37-38页 |
| ·培养基成分的正交优化结果 | 第38-42页 |
| ·粘多糖 A 的扩大发酵结果 | 第42-44页 |
| ·小结 | 第44-45页 |
| 第三章 粘多糖 A 分离纯化工艺的改进 | 第45-57页 |
| ·前言 | 第45页 |
| ·实验材料 | 第45-47页 |
| ·实验仪器 | 第45-46页 |
| ·实验药品 | 第46-47页 |
| ·实验方法 | 第47-51页 |
| ·硅藻土板框过滤方法 | 第47-48页 |
| ·粘多糖 A 含量的测定 | 第48-49页 |
| ·菌体含量的测定 | 第49页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第49-50页 |
| ·硅藻土板框过滤方法的改进 | 第50-51页 |
| ·红外光谱测定粘多糖 A 的结构 | 第51页 |
| ·实验结果与讨论 | 第51-55页 |
| ·改进后硅藻土板框过滤结果 | 第51-53页 |
| ·改进前后纯化效果的对比 | 第53-54页 |
| ·粘多糖 A 的红外图谱分析 | 第54-55页 |
| ·小结 | 第55-57页 |
| 第四章 兽疫链球菌 BU100 合成粘多糖 A 相关基因的研究 | 第57-69页 |
| ·前言 | 第57-58页 |
| ·实验材料 | 第58页 |
| ·菌种 | 第58页 |
| ·实验仪器 | 第58页 |
| ·实验方法 | 第58-63页 |
| ·兽疫链球菌 BU100 基因组的提取 | 第58-60页 |
| ·引物设计及 PCR 扩增 | 第60-62页 |
| ·16S rDNA 鉴定 | 第62-63页 |
| ·结果与讨论 | 第63-67页 |
| ·BU100 基因组的提取结果 | 第63-65页 |
| ·粘多糖 A 合成酶相关基因的 PCR 扩增 | 第65-66页 |
| ·16S rDNA 鉴定结果 | 第66-67页 |
| ·引物设计原则及问题分析 | 第67页 |
| ·小结 | 第67-69页 |
| 第五章 结论与建议 | 第69-71页 |
| ·结论 | 第69-70页 |
| ·建议 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第76-77页 |
| 作者及导师简介 | 第77-78页 |
| 附件 | 第78-79页 |