| 第一章 文献综述 | 第1-34页 |
| ·油菜雄性不育的主要类型 | 第12-13页 |
| ·油菜雄性不育的来源 | 第13-14页 |
| ·油菜雄性不育的分子机理研究 | 第14-25页 |
| ·雄性不育植株花药的基因表达特点 | 第14-17页 |
| ·油菜细胞质雄性不育分子机理 | 第17-23页 |
| ·油菜细胞质雄性不育与线粒体分子生物学 | 第17-22页 |
| ·与 ＣＭＳ 有关的线粒体基因或片段 | 第17-18页 |
| ·线粒体基因表达与 ＣＭＳ | 第18-19页 |
| ·线粒体蛋白与 ＣＭＳ | 第19-20页 |
| ·线粒体基因组重排引起细胞质雄性不育 | 第20-21页 |
| ·ＲＮＡ 编辑(ＲＮＡｅｄｉｔｉｎｇ)是细胞质雄性不育的一种可能机制 | 第21-22页 |
| ·油菜细胞质雄性不育与叶绿体基因组 | 第22-23页 |
| ·油菜细胞核雄性不育的分子机理 | 第23-25页 |
| ·分子标记辅助选择在油菜雄性不育研究中的应用 | 第25-33页 |
| ·分子标记种类 | 第25-26页 |
| ·核雄性育性基因分子标记的策略 | 第26-29页 |
| ·分子标记辅助选择的一般原理 | 第29-30页 |
| ·分子标记辅助选择育种的一般程序 | 第30页 |
| ·分子标记辅助选择与 ＣＭＳ 恢复系培育和 ＧＭＳ 利用 | 第30-33页 |
| ·分子标记辅助 ＣＭＳ 恢复系培育 | 第30-31页 |
| ·ＧＭＳ 基因分子标记与 ＧＭＳ 在杂种优势利用上的应用 | 第31-33页 |
| ·本研究的立论依据和意义 | 第33-34页 |
| 第二章 实验部分 | 第34-49页 |
| ·材料与方法 | 第34-38页 |
| ·实验材料与试剂 | 第34-35页 |
| ·植物材料 | 第34页 |
| ·试剂 | 第34-35页 |
| ·方法 | 第35-38页 |
| ·群体的获得及育性调查 | 第35页 |
| ·ＲＡＰＤ 标记 | 第35-37页 |
| ·甘蓝型油菜基因组 ＤＮＡ 的提取 | 第35-36页 |
| ·ＤＮＡ 提取方法 | 第35-36页 |
| ·ＤＮＡ 纯度和分子量测定 | 第36页 |
| ·集团构建 | 第36页 |
| ·ＲＡＰＤ 反应条件的优化 | 第36页 |
| ·ＰＣＲ 程序 | 第36-37页 |
| ·与油菜单显性核不育基因相连锁的ＲＡＰＤ 标记的筛选 | 第37页 |
| ·ＲＡＰＤ 标记物的序列测定及同源性比较 | 第37-38页 |
| ·结果与分析 | 第38-44页 |
| ·单显性核不育油菜的育性表现及遗传分析 | 第38页 |
| ·用于ＲＡＰＤ分析油菜总ＤＮＡ的简便提取 | 第38-39页 |
| ·ＤＮＡ 的纯度和分子量 | 第38页 |
| ·ＰＣＲ 扩增结果 | 第38-39页 |
| ·ＲＡＰＤ 反应条件的优化 | 第39-40页 |
| ·ＲＡＰＤ 分析 | 第40-43页 |
| ·集团间多态性引物的筛选 | 第40-41页 |
| ·群体各单株 ＲＡＰＤ 分析 | 第41-42页 |
| ·其它类型油菜的 ＲＡＰＤ 分析 | 第42页 |
| ·ＲＡＰＤ 标记 ＯＰＵ－031500与单显性核不育基因位点的距离 | 第42-43页 |
| ·ＲＡＰＤ 标记物的序列测定及同源性比较 | 第43-44页 |
| ·讨论 | 第44-48页 |
| ·影响 ＲＡＰＤ 反应的因素 | 第44-45页 |
| ·ＤＮＡ 模板纯度 | 第44页 |
| ·ＤＮＡ 模板的浓度和大小 | 第44-45页 |
| ·ＭｇＣｌ2浓度 | 第45页 |
| ·Ｔａｑ 酶 | 第45页 |
| ·关于所选 ＲＡＰＤ 标记 ＯＰＵ－0 | 第45-46页 |
| ·ＲＡＰＤ 标记转换的必要性及方法 | 第46页 |
| ·分子标记辅助选择 | 第46-47页 |
| ·关于显性核不育的利用 | 第47-48页 |
| ·结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60-62页 |
| 附录 | 第62-65页 |
