| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略词简表 | 第10-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-37页 |
| 1.1 引言 | 第16页 |
| 1.2 关节软骨的损伤形式和修复手段 | 第16-19页 |
| 1.2.1 关节软骨的结构特征 | 第16-17页 |
| 1.2.2 关节软骨损伤形式和主要修复手段 | 第17-19页 |
| 1.3 组织工程支架材料 | 第19-23页 |
| 1.3.1 合成高分子水凝胶材料 | 第19-20页 |
| 1.3.2 天然高分子水凝胶材料 | 第20-23页 |
| 1.4 水凝胶的化学交联反应 | 第23-28页 |
| 1.4.1 自由基聚合 | 第23-24页 |
| 1.4.2 点击化学 | 第24-28页 |
| 1.5 可注射水凝胶 | 第28-29页 |
| 1.6 3D生物打印 | 第29-33页 |
| 1.6.1 喷墨生物打印（Inkjet Bioprinting） | 第30-31页 |
| 1.6.2 激光辅助生物打印（Laser-assisted Bioprinting） | 第31页 |
| 1.6.3 立体光刻生物打印（Stereolithography Bioprinting） | 第31页 |
| 1.6.4 微挤出生物打印（Microextrusion Bioprinting） | 第31-33页 |
| 1.7 课题的研究目的意义内容与创新 | 第33-37页 |
| 1.7.1 研究目的与意义 | 第33-34页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第34-36页 |
| 1.7.3 技术路线 | 第36页 |
| 1.7.4 创新点 | 第36-37页 |
| 第二章 呋喃基团间光交联反应制备可控注射HA水凝胶 | 第37-52页 |
| 2.1 引言 | 第37-38页 |
| 2.2 表征设备与试剂 | 第38-39页 |
| 2.2.1 表征设备 | 第38页 |
| 2.2.2 试剂名称 | 第38-39页 |
| 2.3 实验方法 | 第39-43页 |
| 2.3.1 光引发剂LAP的制备及表征 | 第39-40页 |
| 2.3.2 透明质酸的呋喃基团改性（HA-Furan）及表征 | 第40-41页 |
| 2.3.3 HA-furan光交联反应的紫外-可见光分光光度计测试 | 第41-42页 |
| 2.3.4 HA-Furan光交联反应的核磁氢谱测试 | 第42页 |
| 2.3.5 HA-Furan光交联反应的固态核磁测试 | 第42-43页 |
| 2.3.6 光交联HA-Furan水凝胶的制备及其交联机理 | 第43页 |
| 2.4 实验结果及讨论 | 第43-51页 |
| 2.4.1 光引发剂LAP的结构表征 | 第43-44页 |
| 2.4.2 改性透明质酸HA-Furan结构表征 | 第44-45页 |
| 2.4.3 HA-furan光交联反应紫外-可见光分光光度计表征 | 第45-48页 |
| 2.4.4 光交联可控注射HA-Furan水凝胶成胶核磁氢谱测试 | 第48-49页 |
| 2.4.5 HA-furan光交联反应固态核磁表征 | 第49-50页 |
| 2.4.6 光交联HA-Furan水凝胶的可控注射成型 | 第50-51页 |
| 2.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第三章 双交联HA/PEG水凝胶 | 第52-68页 |
| 3.1 引言 | 第52-53页 |
| 3.2 表征设备与试剂 | 第53-54页 |
| 3.2.1 表征设备 | 第53页 |
| 3.2.2 试剂名称 | 第53-54页 |
| 3.3 实验方法 | 第54-61页 |
| 3.3.1 呋喃基团改性透明质酸（HA-Furan）的制备 | 第54页 |
| 3.3.2 双交联HA/PEG水凝胶的制备 | 第54-55页 |
| 3.3.3 紫外光照对于双交联HA/PEG水凝胶体系温度的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.4 双交联HA/PEG水凝胶的成胶时间 | 第56-57页 |
| 3.3.5 双交联HA/PEG水凝胶的微观网络形貌 | 第57-58页 |
| 3.3.6 双交联HA/PEG水凝胶的溶胀性能 | 第58页 |
| 3.3.7 双交联HA/PEG水凝胶的力学性能 | 第58-59页 |
| 3.3.8 紫外光照时间对于ATDC-5细胞的活性影响 | 第59-60页 |
| 3.3.9 双交联可控注射水凝胶的细胞相容性 | 第60-61页 |
| 3.4 实验结果及讨论 | 第61-67页 |
| 3.4.1 紫外光照对于成胶体系温度的影响 | 第61-62页 |
| 3.4.2 光引发剂含量对双交联水凝胶的凝胶化时间影响 | 第62-63页 |
| 3.4.3 双交联HA/PEG水凝胶的微观网络形貌 | 第63-64页 |
| 3.4.4 不同光照时间对双交联水凝胶的溶胀性能的影响 | 第64-65页 |
| 3.4.5 双交联反应对于水凝胶力学性能的影响 | 第65-66页 |
| 3.4.6 紫外光照时间对ATDC-5细胞活性的影响 | 第66页 |
| 3.4.7 双交联HA/PEG水凝胶的细胞相容性 | 第66-67页 |
| 3.5 本章小结 | 第67-68页 |
| 第四章 快速光交联HA/PEG水凝胶 | 第68-86页 |
| 4.1 引言 | 第68-69页 |
| 4.2 表征设备与试剂 | 第69-70页 |
| 4.2.1 表征设备 | 第69页 |
| 4.2.2 试剂名称 | 第69-70页 |
| 4.3 实验方法 | 第70-77页 |
| 4.3.1 呋喃基团改性透明质酸HA-Furan的制备 | 第70页 |
| 4.3.2 马来酰亚胺改性HA-Furan制备HA-Furan-Mal | 第70-71页 |
| 4.3.3 类降冰片稀基团和巯基基团间的Thiol-ene反应机理 | 第71-72页 |
| 4.3.4 快速光交联HA/PEG水凝胶的制备及固态核磁表征 | 第72-73页 |
| 4.3.5 快速光交联HA/PEG水凝胶的凝胶化时间 | 第73-74页 |
| 4.3.6 快速光交联HA/PEG水凝胶溶胀性能 | 第74-75页 |
| 4.3.7 快速光交联HA/PEG水凝胶的微观形貌 | 第75页 |
| 4.3.8 快速光交联HA/PEG水凝胶力学性能 | 第75-76页 |
| 4.3.9 快速光交联HA/PEG复合水凝胶细胞相容性 | 第76-77页 |
| 4.4 实验结果及讨论 | 第77-85页 |
| 4.4.1 呋喃基团改性透明质酸基团制备HA-Furan | 第77页 |
| 4.4.2 马来酰亚胺改性HA-Furan制备HA-Furan-Mal表征 | 第77-78页 |
| 4.4.3 快速成型HA/PEG复合水凝胶的宏观形貌 | 第78-79页 |
| 4.4.4 快速光交联HA/PEG水凝胶的固态核磁表征 | 第79-80页 |
| 4.4.5 快速光交联HA/PEG水凝胶的凝胶化时间 | 第80-81页 |
| 4.4.6 不同光照时间对快速光交联HA/PEG水凝胶溶胀性能的影响 | 第81-82页 |
| 4.4.7 不同光照时间对快速成型HA/PEG复合水凝胶网络结构的影响 | 第82-83页 |
| 4.4.8 不同光照时间对快速光交联HA/PEG水凝胶力学性能的影响 | 第83-84页 |
| 4.4.9 快速成型HA/PEG复合水凝胶的细胞相容性表征 | 第84-85页 |
| 4.5 本章小结 | 第85-86页 |
| 第五章 网络结构图案化HA/PEG水凝胶 | 第86-101页 |
| 5.1 引言 | 第86-87页 |
| 5.2 表征设备与试剂 | 第87-88页 |
| 5.2.1 表征设备 | 第87-88页 |
| 5.2.2 试剂名称 | 第88页 |
| 5.3 实验方法 | 第88-93页 |
| 5.3.1 图案化掩膜的制备 | 第88页 |
| 5.3.2 网络结构图案化HA/PEG水凝胶的制备 | 第88-89页 |
| 5.3.3 网络结构图案化HA/PEG水凝胶的微观形貌 | 第89-90页 |
| 5.3.4 网络结构图案化HA/PEG水凝胶的力学性能 | 第90-91页 |
| 5.3.5 网络结构图案化HA/PEG水凝胶的溶胀性能 | 第91页 |
| 5.3.6 网络结构图案化HA/PEG水凝胶三维包裹ATDC5细胞 | 第91-92页 |
| 5.3.7 网络结构图案化HA/PEG水凝胶的细胞相容性 | 第92-93页 |
| 5.4 实验结果及讨论 | 第93-100页 |
| 5.4.1 制备的图案化掩膜 | 第93页 |
| 5.4.2 孔洞结构图案化水凝胶的形貌 | 第93-94页 |
| 5.4.3 网络结构图案化水凝胶微观形貌 | 第94-96页 |
| 5.4.4 网络结构图案化HA/PEG水凝胶的力学性能 | 第96-97页 |
| 5.4.5 网络结构图案化HA/PEG水凝胶的溶胀性能 | 第97-98页 |
| 5.4.6 网络结构图案化HA/PEG水凝胶三维包载ATDC-5 细胞 | 第98-99页 |
| 5.4.7 网络结构图案化HA/PEG水凝胶的细胞相容性 | 第99-100页 |
| 5.5 本章总结 | 第100-101页 |
| 第六章 光交联3D生物打印HA/PEG水凝胶 | 第101-114页 |
| 6.1 引言 | 第101-102页 |
| 6.2 实验设备与使用试剂 | 第102-103页 |
| 6.2.1 设备 | 第102页 |
| 6.2.2 试剂 | 第102-103页 |
| 6.3 实验方法 | 第103-107页 |
| 6.3.1 HA-Furan的制备 | 第103页 |
| 6.3.2 HA-Furan-Mal的制备 | 第103页 |
| 6.3.3 光交联3D打印HA/PEG水凝胶 | 第103-104页 |
| 6.3.4 光交联3D打印HA/PEG水凝胶打印参数对形貌的影响 | 第104页 |
| 6.3.5 光交联3D打印HA/PEG水凝胶的微观形貌 | 第104页 |
| 6.3.6 小鼠骨髓间充质干细胞（mBMSCs）培养 | 第104页 |
| 6.3.7 光交联3D生物打印HA/PEG水凝胶（包载mBMSCs细胞） | 第104-106页 |
| 6.3.8 光交联3D生物打印HA/PEG水凝胶包载的mBMSCs细胞活性 | 第106页 |
| 6.3.9 光交联3D生物打印HA/PEG水凝胶包载mBMSCs的细胞增殖 | 第106-107页 |
| 6.4 实验结果和讨论 | 第107-113页 |
| 6.4.1 光交联3D打印HA/PEG水凝胶 | 第107页 |
| 6.4.2 打印速度对于光交联3D打印HA/PEG水凝胶形貌的影响 | 第107-108页 |
| 6.4.3 行间距对于光交联3D打印HA/PEG水凝胶形貌的影响 | 第108-109页 |
| 6.4.4 光交联3D打印HA/PEG水凝胶微观形貌 | 第109-110页 |
| 6.4.5 光交联3D生物打印HA/PEG水凝胶（包载mBMSCs细胞） | 第110-111页 |
| 6.4.6 光交联3D生物打印HA/PEG水凝胶包载的mBMSCs细胞活性 | 第111-112页 |
| 6.4.7 光交联3D生物打印HA/PEG水凝胶包载mBMSCs的细胞增殖 | 第112-113页 |
| 6.5 本章总结 | 第113-114页 |
| 结论 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-131页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第131-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 附件 | 第133页 |
