| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-40页 |
| 1.1 听觉系统 | 第14-19页 |
| 1.1.1 声音与听觉 | 第14-15页 |
| 1.1.2 听觉发育的关键期 | 第15-18页 |
| 1.1.2.1 关键期的界定 | 第15-16页 |
| 1.1.2.2 关键期的调控 | 第16页 |
| 1.1.2.3 关键期听觉传入的影响 | 第16-17页 |
| 1.1.2.4 关键期的兴奋与抑制平衡 | 第17-18页 |
| 1.1.3 听皮层与学习记忆 | 第18-19页 |
| 1.1.3.1 听皮层在信息处理加工中的作用 | 第18页 |
| 1.1.3.2 听皮层可塑性与学习记忆 | 第18-19页 |
| 1.2 听力损伤 | 第19-26页 |
| 1.2.1 外周损伤对听觉系统形态结构的影响 | 第20-22页 |
| 1.2.1.1 外周损伤对耳蜗的影响 | 第20-22页 |
| 1.2.1.1.1 急性声暴露对耳蜗的影响 | 第20-21页 |
| 1.2.1.1.2 老年性耳聋对耳蜗的影响 | 第21-22页 |
| 1.2.1.2 外周损伤对螺旋神经节的影响 | 第22页 |
| 1.2.2 听觉损伤对听觉系统神经元信号通路的影响 | 第22-24页 |
| 1.2.2.1 听觉损伤对细胞信号的影响 | 第23页 |
| 1.2.2.2 听觉损伤对神经化学信号的影响 | 第23-24页 |
| 1.2.3 听觉损伤对听觉系统神经元电活动的影响 | 第24-25页 |
| 1.2.3.1 对听神经电活动的影响 | 第24-25页 |
| 1.2.3.2 对耳蜗核电活动的影响 | 第25页 |
| 1.2.3.3 对下丘电活动的影响 | 第25页 |
| 1.2.3.4 对内侧膝状体电活动的影响 | 第25页 |
| 1.2.3.5 对听觉皮层电活动的影响 | 第25页 |
| 1.2.4 听觉损伤对非听觉系统的影响 | 第25-26页 |
| 1.2.4.1 视觉序列学习 | 第26页 |
| 1.2.4.2 运动技能 | 第26页 |
| 1.2.4.3 视觉注意 | 第26页 |
| 1.3 海马 | 第26-33页 |
| 1.3.1 海马的解剖结构 | 第27页 |
| 1.3.2 海马的信号环路 | 第27-29页 |
| 1.3.3 海马与学习记忆 | 第29-32页 |
| 1.3.3.1 联合编码 | 第30页 |
| 1.3.3.2 模式分离 | 第30-31页 |
| 1.3.3.3 模式完成 | 第31-32页 |
| 1.3.3.4 情景记忆 | 第32页 |
| 1.3.3.5 空间定位 | 第32页 |
| 1.3.4 海马学习记忆与突触可塑性 | 第32-33页 |
| 1.4 NMDA受体 | 第33-37页 |
| 1.4.1 NMDA与非NMDA离子型谷氨酸受体 | 第33-36页 |
| 1.4.2 NMDA受体的亚基组成和分布 | 第36页 |
| 1.4.3 NMDA受体和海马突触可塑性 | 第36-37页 |
| 1.5 本研究要回答的问题 | 第37-40页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第40-52页 |
| 2.1 听觉发育关键期的听力剥夺 | 第40-41页 |
| 2.2 听觉脑干反应检测 | 第41页 |
| 2.3 学习记忆的相关行为学检测 | 第41-42页 |
| 2.3.1 旷场实验 | 第41-42页 |
| 2.3.2 Y迷宫检测 | 第42页 |
| 2.3.3 Morris水迷宫 | 第42页 |
| 2.4 在体的电生理记录 | 第42-44页 |
| 2.4.1 输入/输出(I/O)功能 | 第43页 |
| 2.4.2 双脉冲反应(PPR) | 第43页 |
| 2.4.3 长时程增强(LTP) | 第43-44页 |
| 2.5 脑片记录 | 第44-46页 |
| 2.5.1 脑片及溶液准备 | 第44-45页 |
| 2.5.2 NMDA和AMPA受体介导的eEPSCs记录 | 第45页 |
| 2.5.3 NMDA受体介导的mEPSCs记录 | 第45-46页 |
| 2.6 免疫蛋白印迹 | 第46-47页 |
| 2.6.1 蛋白样品的制备 | 第46页 |
| 2.6.2 免疫印迹实验过程 | 第46-47页 |
| 2.7 BrdU的给药和免疫组化计数 | 第47-48页 |
| 2.7.1 BrdU的给药 | 第47-48页 |
| 2.7.2 BrdU的免疫组化 | 第48页 |
| 2.7.3 BrdU的计数 | 第48页 |
| 2.8 Golgi-Cox染色 | 第48-49页 |
| 2.8.1 切片处理 | 第48-49页 |
| 2.8.2 染色步骤 | 第49页 |
| 2.9 透射电子显微镜 | 第49页 |
| 2.10 逆行示踪注射 | 第49-50页 |
| 2.11 数据分析 | 第50-52页 |
| 第三章 结果 | 第52-70页 |
| 3.1 早期鼓膜穿孔手术引起暂时性听力剥夺 | 第52-53页 |
| 3.2 早期暂时性听力剥夺损伤学习记忆 | 第53-56页 |
| 3.2.1 早期暂时性听力剥夺不影响旷场实验的行为表现 | 第53-54页 |
| 3.2.2 早期暂时性听力剥夺损伤Y迷宫实验的行为表现 | 第54-55页 |
| 3.2.3 早期暂时性听力剥夺损伤Morris水迷宫的行为表现 | 第55-56页 |
| 3.3 早期暂时性听力剥夺损伤海马功能突触可塑性 | 第56-59页 |
| 3.3.1 早期暂时性听力剥夺压抑输入/输出(I/O)曲线 | 第56-57页 |
| 3.3.2 早期暂时性听力剥夺不影响双脉冲比率(PPR) | 第57-58页 |
| 3.3.3 早期暂时性听力剥夺损伤长时程增强(LTP) | 第58-59页 |
| 3.4 早期暂时性听力剥夺引起NMDA受体介导的mEPSC幅度下降 | 第59-60页 |
| 3.5 早期暂时性听力剥夺不影响细胞膜特性 | 第60-61页 |
| 3.6 早期暂时性听力剥夺引起NMDA受体诱发的兴奋性突触后电流下降,但对AMPA受体的无影响 | 第61-63页 |
| 3.7 早期暂时性听力剥夺导致表达的NR2A/NR2B的比值增加 | 第63-64页 |
| 3.8 早期暂时性听力剥夺引起海马CA1区锥体神经元的树突棘数目减少 | 第64-65页 |
| 3.9 早期暂时性听力剥夺引起海马CA1区锥体神经元的突触后致密斑密度减少 | 第65-66页 |
| 3.10 早期暂时性听力剥夺引起BrdU染色新生细胞数目减少 | 第66-67页 |
| 3.11 听皮层到海马有直接联系 | 第67-70页 |
| 第四章 讨论 | 第70-76页 |
| 4.1 实验结论 | 第70页 |
| 4.2 实验结果分析 | 第70-73页 |
| 4.2.1 听力损失模型的建立 | 第70-71页 |
| 4.2.2 听觉与海马之间的联系 | 第71页 |
| 4.2.3 行为学实验与NMDA受体与LTP联系 | 第71-72页 |
| 4.2.4 NR2A和NR2B与LIP联系 | 第72-73页 |
| 4.2.5 神经发生与LIP联系 | 第73页 |
| 4.3 本研究的创新、不足之处及展望 | 第73-76页 |
| 参考文献 | 第76-93页 |
| 附录1 缩略词表 | 第93-96页 |
| 附录2 仪器设备 | 第96-98页 |
| 附录3 主要原始数据文件名称 | 第98-100页 |
| 附录4 海马脑片制作步骤 | 第100-101页 |
| 附录5 实验中主要溶液的配制步骤 | 第101-105页 |
| 致谢 | 第105-108页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的研究成果 | 第108-109页 |
| 个人简历 | 第109页 |
