本论文创新点 | 第5-10页 |
摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-13页 |
第一章 绪论 | 第14-57页 |
1.1 引言 | 第14页 |
1.2 化学发光的分类及其在检测中的应用 | 第14-31页 |
1.2.1 基于金属离子催化的化学发光分析法及其在检测中的应用 | 第15-16页 |
1.2.2 基于生物酶催化的化学发光分析法及其在检测中的应用 | 第16-24页 |
1.2.2.1 基于碱性磷酸酶催化的化学发光分析法 | 第17-19页 |
1.2.2.2 基于辣根过氧化物酶催化的化学发光分析法 | 第19-22页 |
1.2.2.3 基于萤光素酶催化的化学发光分析法 | 第22-24页 |
1.2.3 基于模拟酶催化的化学发光分析法及其在检测中的应用 | 第24-29页 |
1.2.3.1 基于脱氧核酶催化的化学发光分析法 | 第25-28页 |
1.2.3.2 基于纳米材料模拟酶催化的化学发光分析法 | 第28-29页 |
1.2.4 无催化剂的化学发光分析法及其在检测中的应用 | 第29-31页 |
1.3 信号放大技术的分类及其在检测中的应用 | 第31-37页 |
1.3.1 基于生物酶的信号放大技术及其在检测中的应用 | 第31-34页 |
1.3.2 基于模拟酶的信号放大技术及其在检测中的应用 | 第34-35页 |
1.3.3 基于核酸自组装的信号放大技术及其在检测中的应用 | 第35-37页 |
1.4 本论文立题思想和主要工作 | 第37-38页 |
参考文献 | 第38-57页 |
第二章 磁性微球表面DNA步行者传感及其用于核酸和T4磷酸激酶活性检测 | 第57-78页 |
2.1 引言 | 第57-58页 |
2.2 实验部分 | 第58-60页 |
2.2.1 材料和试剂 | 第58-59页 |
2.2.2 仪器设备 | 第59页 |
2.2.3 DNA溶液配制 | 第59页 |
2.2.4 磁性微球偶联发钱结构DNA | 第59页 |
2.2.5 核酸检测 | 第59-60页 |
2.2.6 无CHA放大的核酸检测 | 第60页 |
2.2.7 T4磷酸激酶活性检测 | 第60页 |
2.2.8 凝胶电泳 | 第60页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第60-73页 |
2.3.1 实验原理 | 第60-62页 |
2.3.2 实验条件优化 | 第62-65页 |
2.3.2.1 磁性微球表面H1数量的影响 | 第62-63页 |
2.3.2.2 H2浓度的影响 | 第63页 |
2.3.2.3 磁性微球用量的影响 | 第63-64页 |
2.3.2.4 其它参数的影响 | 第64-65页 |
2.3.3 核酸检测的线性关系和选择性实验 | 第65-67页 |
2.3.4 两种模型检出限差别的探讨 | 第67-68页 |
2.3.5 抗干扰研究 | 第68-69页 |
2.3.6 无循环放大实验 | 第69-70页 |
2.3.7 HIV序列检测分析 | 第70-71页 |
2.3.8 凝胶电泳结果 | 第71-72页 |
2.3.9 T4磷酸激酶活性检测 | 第72-73页 |
2.4 小结 | 第73页 |
参考文献 | 第73-78页 |
第三章 磁球表面多脚DNA步行者在蛋白检测中的应用 | 第78-102页 |
3.1 引言 | 第78-79页 |
3.2 实验部分 | 第79-81页 |
3.2.1 材料和试剂 | 第79-80页 |
3.2.2 仪器设备 | 第80页 |
3.2.3 磁性微球偶联DNA | 第80页 |
3.2.4 基于CHA的DNA步行者检测SA | 第80-81页 |
3.2.5 基于ISDPR的DNA步行者检测SA | 第81页 |
3.2.6 选择性分析 | 第81页 |
3.2.7 抗干扰能力分析 | 第81页 |
3.2.8 凝胶电泳成像 | 第81页 |
3.3 实验结果与讨论 | 第81-98页 |
3.3.1 基于CHA的DNA步行者传感器实验原理 | 第81-82页 |
3.3.2 基于CHA的DNA步行者传感器的实验条件优化 | 第82-85页 |
3.3.2.1 CHA-catalyst链浓度的影响 | 第82-83页 |
3.3.2.2 外切酶Ⅰ用量的影响 | 第83页 |
3.3.2.3 H2浓度的影响 | 第83-84页 |
3.3.2.4 SA-HRP浓度的影响 | 第84-85页 |
3.3.2.5 磁性微球用量的影响 | 第85页 |
3.3.3 基于CHA的DNA步行者传感器的线性关系和选择性 | 第85-86页 |
3.3.4 基于ISDPR的DNA步行者传感器的实验原理 | 第86-87页 |
3.3.5 基于ISDPR的DNA步行者传感器的实验条件优化 | 第87-91页 |
3.3.5.1 Primer碱基数目的影响 | 第87-88页 |
3.3.5.2 外切酶Ⅰ用量的影响 | 第88-89页 |
3.3.5.3 聚合酶用量的影响 | 第89-90页 |
3.3.5.4 其它参数的影响 | 第90-91页 |
3.3.6 基于ISDPR的DNA步行者传感器线性关系和选择性 | 第91-92页 |
3.3.7 两种DNA步行者传感器的比较 | 第92页 |
3.3.8 抗干扰能力分析 | 第92-93页 |
3.3.9 叶酸受体和凝血酶检测 | 第93-97页 |
3.3.10 凝胶电泳结果 | 第97-98页 |
3.4 小结 | 第98页 |
参考文献 | 第98-102页 |
第四章 磁球表面空间位阻调控双脚DNA行走及其在核酸检测方面的应用 | 第102-119页 |
4.1 引言 | 第102-103页 |
4.2 实验部分 | 第103-106页 |
4.2.1 材料和试剂 | 第103-104页 |
4.2.2 仪器设备 | 第104页 |
4.2.3 磁性微球偶联DNA | 第104页 |
4.2.4 DNA步行者的空间位阻实验 | 第104-105页 |
4.2.5 核酸检测 | 第105页 |
4.2.6 选择性分析 | 第105页 |
4.2.7 抗干扰能力分析 | 第105页 |
4.2.8 凝胶电泳成像 | 第105页 |
4.2.9 磁性微球上H1含量测定 | 第105-106页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第106-115页 |
4.3.1 实验原理 | 第106-107页 |
4.3.2 空间位阻对单脚DNA步行者和双脚DNA步行者的影响 | 第107-108页 |
4.3.3 不同长度位阻链的影响 | 第108-109页 |
4.3.4 发卡结构的位阻链的影响 | 第109-110页 |
4.3.5 磁性微球上位阻链数量的影响 | 第110-111页 |
4.3.6 反应时间的影响 | 第111页 |
4.3.7 磁性微球偶联H1数量的计算 | 第111-112页 |
4.3.8 核酸检测 | 第112-113页 |
4.3.9 抗干扰能力分析 | 第113-114页 |
4.3.10 凝胶电泳分析 | 第114-115页 |
4.4 小结 | 第115页 |
参考文献 | 第115-119页 |
第五章 基于磁球表面杂交链式反应化学发光成像检测凝血酶 | 第119-137页 |
5.1 引言 | 第119-120页 |
5.2 实验部分 | 第120-122页 |
5.2.1 材料和试剂 | 第120页 |
5.2.2 仪器设备 | 第120-121页 |
5.2.3 磁性微球偶联DNA | 第121页 |
5.2.4 基于置换模型的凝血酶检测 | 第121页 |
5.2.5 基于夹心模型的凝血酶检测 | 第121页 |
5.2.6 选择性分析 | 第121页 |
5.2.7 抗干扰能力分析 | 第121-122页 |
5.2.8 凝胶电泳成像 | 第122页 |
5.2.9 原子力显微镜表征 | 第122页 |
5.3 实验结果与讨论 | 第122-132页 |
5.3.1 基于置换模型的实验原理 | 第122-123页 |
5.3.2 无HCR模型的对比 | 第123-124页 |
5.3.3 置换模型的实验条件优化 | 第124-126页 |
5.3.4 置换模型的工作曲线和选择性实验 | 第126-127页 |
5.3.5 核酸检测 | 第127页 |
5.3.6 夹心模型的实验原理 | 第127-128页 |
5.3.7 夹心模型的实验条件优化 | 第128-129页 |
5.3.8 夹心模型的工作曲线和选择性实验 | 第129-130页 |
5.3.9 抗干扰能力分析 | 第130-131页 |
5.3.10 AFM表征 | 第131-132页 |
5.4 小结 | 第132-133页 |
参考文献 | 第133-137页 |
总结与展望 | 第137-138页 |
附录: 攻博期间已发表和待发表的文章 | 第138-139页 |
致谢 | 第139页 |