摘要 | 第3-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
主要缩略词语汇表 | 第11-12页 |
第1章 引言 | 第12-26页 |
1.1 UV-B辐射 | 第12-20页 |
1.1.1 UV-B辐射增强是一个重要的环境问题 | 第12页 |
1.1.2 UV-B辐射对植物的影响 | 第12-13页 |
1.1.3 UV-B辐射的信号转导机制研究概述 | 第13-14页 |
1.1.4 依赖于UV-B受体UVR8的UV-B专一信号转导途径 | 第14-18页 |
1.1.5 不依赖于UVR8的UV-B非专一信号转导途径 | 第18-20页 |
1.2 乙烯生物合成途径以及信号转导通路 | 第20-23页 |
1.2.1 乙烯生物合成途径 | 第20页 |
1.2.2 ACC合酶的研究现状 | 第20-21页 |
1.2.3 乙烯的信号转导途径 | 第21-23页 |
1.3 乙烯在植物响应UV-B辐射中的作用 | 第23-24页 |
1.3.1 UV-B辐射对乙烯生物合成的影响 | 第23页 |
1.3.2 乙烯参与的UV-B辐射反应 | 第23-24页 |
1.3.3 UV-B辐射调控乙烯信号转导的机制 | 第24页 |
1.4 UVR8信号通路与乙烯信号转导途径的关系 | 第24页 |
1.5 论文选题的目的与意义 | 第24-26页 |
第2章 材料与方法 | 第26-34页 |
2.1 实验材料、试剂及主要仪器 | 第26-27页 |
2.1.1 植物材料 | 第26页 |
2.1.2 主要试剂 | 第26页 |
2.1.3 主要仪器 | 第26-27页 |
2.2 实验方法 | 第27-34页 |
2.2.1 材料培养及缓冲液配方 | 第27页 |
2.2.2 UV-B辐射处理 | 第27页 |
2.2.3 双突变体的构建和鉴定 | 第27-30页 |
2.2.4 植物RNA的提取及反转录 | 第30-31页 |
2.2.5 半定量PCR(RT-PCR) | 第31-33页 |
2.2.6 实时定量PCR (qRT-PCR) | 第33-34页 |
第3章 实验结果与分析 | 第34-54页 |
3.1 rup1/rup2纯合双突变体的杂交和鉴定 | 第34-35页 |
3.2 UV-B辐射剂量的确定 | 第35-36页 |
3.3 不同剂量UV-B辐射对拟南芥叶片ACS基因表达的影响 | 第36-41页 |
3.3.1 低剂量UV-B辐射对拟南芥叶片ACS基因表达影响的时间过程 | 第37-38页 |
3.3.2 高剂量UV-B辐射对拟南芥叶片ACS基因表达影响的时间过程 | 第38-41页 |
3.4 UVR8信号通路主要成员在不同剂量UV-B辐射诱导ACS基因表达中的作用 | 第41-50页 |
3.4.1 UVR8在不同剂量UV-B辐射诱导ACS基因表达中的作用 | 第41-43页 |
3.4.2 COP1在不同剂量UV-B辐射诱导ACS基因表达中的作用 | 第43-45页 |
3.4.3 HY5/HYH在不同剂量UV-B辐射诱导ACS基因表达中的作用 | 第45-48页 |
3.4.4 RUP1/2在不同剂量UV-B辐射诱导ACS基因表达中的作用 | 第48-50页 |
3.5 乙烯在不同剂量UV-B辐射诱导UVR8信号通路成员HY5和HYH基因表达中的作用 | 第50-54页 |
3.5.1 乙烯受体在不同剂量UV-B辐射诱导HY5和HYH基因表达中的作用 | 第51-52页 |
3.5.2 乙烯信号元件在不同剂量UV-B辐射诱导HY5和HYH基因表达中的作用 | 第52-54页 |
第4章 讨论 | 第54-60页 |
4.1 不同剂量UV-B辐射调控了哪些种类的ACS基因表达 | 第54-55页 |
4.2 UVR8信号通路在不同剂量UV-B辐射调控各个ACS基因表达中的作用 | 第55-57页 |
4.3 乙烯信号转导途径参与了UV-B辐射对UVR8信号通路成员HY5和HYH的基因表达的诱导作用 | 第57-58页 |
4.4 有待进一步研究的问题 | 第58-60页 |
第5章 总结 | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-78页 |
致谢 | 第78-80页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第80页 |