摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
缩略语参考表 | 第11-12页 |
第一章 前言 | 第12-33页 |
1.1 脂肪肝概述 | 第12-16页 |
1.1.1 脂肪肝的发病机制的国内外研究成果 | 第13-15页 |
1.1.2 脂肪肝的治疗 | 第15-16页 |
1.2 食用菌的研究历史与现状 | 第16-23页 |
1.2.1 食用菌的概念 | 第16-17页 |
1.2.2 食用菌多糖的生理活性 | 第17-20页 |
1.2.3 食用菌多糖的提取 | 第20-23页 |
1.3 灰树花多糖的生物活性与研究进展 | 第23-27页 |
1.3.1 灰树花简介 | 第23-24页 |
1.3.2 灰树花多糖的生理活性 | 第24-27页 |
1.4 壳聚糖的生理活性与研究进展 | 第27-31页 |
1.4.1 壳聚糖简介 | 第27页 |
1.4.2 壳聚糖的生理活性 | 第27-31页 |
1.5 本研究的目的、意义与试验内容 | 第31-33页 |
第二章 灰树花多糖提取条件的优化 | 第33-45页 |
2.1 试验材料 | 第33页 |
2.2 主要仪器与设备 | 第33-34页 |
2.3 试验方法介绍 | 第34-35页 |
2.3.1 超声辅助酶解试验的参数评价方法 | 第34页 |
2.3.2 苯酚-浓硫酸测定灰树花多糖含量方法 | 第34-35页 |
2.4 热水浸提法下试验不同料液比对灰树花多糖提取率的影响与分析 | 第35-37页 |
2.5 超声波辅助复合酶解法提取灰树花多糖的单因素试验条件优化 | 第37-40页 |
2.5.1 不同的酶解PH值对灰树花多糖提取率的影响与分析 | 第37-38页 |
2.5.2 不同的酶解时长对灰树花多糖提取率的影响与分析 | 第38页 |
2.5.3 不同的酶解温度对灰树花多糖提取率的影响与分析 | 第38-39页 |
2.5.4 不同的超声波功率对灰树花多糖提取率的影响与分析 | 第39-40页 |
2.6 正交试验法对灰树花粗多糖提取工艺的优化 | 第40-43页 |
2.6.1 正交试验参数 | 第40-41页 |
2.6.2 结果与分析 | 第41-43页 |
2.7 结果与讨论 | 第43-45页 |
第三章 灰树花多糖对非酒精性脂肪肝小鼠的保护作用研究 | 第45-59页 |
3.1 试验材料与准备 | 第45-46页 |
3.1.1 试验动物 | 第45页 |
3.1.2 试验材料 | 第45页 |
3.1.3 试验仪器 | 第45-46页 |
3.1.4 试验药剂的制备 | 第46页 |
3.2 试验方法 | 第46-49页 |
3.2.1 试验分组与给药 | 第46-47页 |
3.2.2 试验与取样方法 | 第47-48页 |
3.2.3 检测与分析 | 第48-49页 |
3.3 试验结果 | 第49-59页 |
3.3.1 每日观察总结 | 第49-50页 |
3.3.2 病理形态学结果 | 第50-52页 |
3.3.3 灰树花多糖对NAFL小鼠血清脂质的影响 | 第52-54页 |
3.3.4 灰树花多糖对NAFL小鼠血清酶指标的影响 | 第54-55页 |
3.3.5 讨论 | 第55-59页 |
第四章 壳聚糖对非酒精性脂肪肝小鼠的保护作用研究 | 第59-68页 |
4.1 试验材料与准备 | 第59-60页 |
4.1.1 试验动物 | 第59页 |
4.1.2 试验材料 | 第59页 |
4.1.3 试验仪器 | 第59页 |
4.1.4 试验药剂的制备 | 第59-60页 |
4.2 试验方法 | 第60-61页 |
4.2.1 试验分组与给药 | 第60页 |
4.2.2 试验与取样方法 | 第60-61页 |
4.2.3 检测与分析 | 第61页 |
4.3 试验结果 | 第61-66页 |
4.3.1 每日观察总结 | 第61-62页 |
4.3.2 病理形态学结果 | 第62-63页 |
4.3.3 壳聚糖对NAFL小鼠的血清脂质影响结果 | 第63-65页 |
4.3.4 壳聚糖对NAFL小鼠血清酶指标的影响 | 第65-66页 |
4.4 讨论 | 第66-68页 |
4.4.1 NAFLD模型的建立及评价 | 第66页 |
4.4.2 壳聚糖对NAFLD与脂代谢紊乱的作用 | 第66-67页 |
4.4.3 壳聚糖对NAFLD与炎症反应的作用 | 第67-68页 |
第五章 灰树花多糖与壳聚糖的降脂护肝作用的对比分析 | 第68-75页 |
总结和展望 | 第75-77页 |
致谢 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-84页 |