| 摘要 | 第10-15页 |
| 英文摘要 | 第15-20页 |
| 前言 | 第21-24页 |
| 第一部分 人参皂苷Rgl在MPTP诱导的帕金森病小鼠模型中的中脑黑质多巴胺神经元保护作用 | 第24-44页 |
| 材料和方法 | 第25-32页 |
| 1. 实验材料 | 第25-27页 |
| 1.1 实验动物 | 第25页 |
| 1.2 主要药品与试剂 | 第25-26页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第26-27页 |
| 2. 实验方法 | 第27-32页 |
| 2.1 动物分组 | 第27页 |
| 2.2 模型制备与给药 | 第27-28页 |
| 2.3 行为学实验 | 第28页 |
| 2.4 脑组织采集 | 第28-29页 |
| 2.5 免疫组织化学(免疫荧光法) | 第29页 |
| 2.6 Western blot (蛋白质免疫印迹）法检测中脑黑质TH和DAT的蛋白表达 | 第29-30页 |
| 2.7 RT-PCR(逆转录多聚合酶链反应)法检测中脑黑质TH和DAT的mRNA表达 | 第30-32页 |
| 2.8 统计学处理 | 第32页 |
| 结果 | 第32-41页 |
| 1. 人参皂苷Rg1对MPTP诱导的帕金森病小鼠行为学的改善作用 | 第32-36页 |
| 2. 人参皂苷Rg1对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑黑质多巴胺神经元数量的影响 | 第36-38页 |
| 3.人参皂苷Rgl对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑黑质TH、DAT蛋白表达水平的影响 | 第38-39页 |
| 4.人参皂苷Rgl对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑黑质TH、DAT mRNA表达水平的影响 | 第39-40页 |
| 5. 人参皂苷Rg1对MPTP诱导的帕金森病小鼠纹状体TH阳性投射纤维的影响 | 第40-41页 |
| 讨论 | 第41-43页 |
| 结论 | 第43-44页 |
| 第二部分 人参皂苷Rgl在MPTP诱导的帕金森病小鼠模型中通过Wnt/p-catenin通路起保护作用 | 第44-63页 |
| 材料和方法 | 第45-52页 |
| 1. 实验材料 | 第45-47页 |
| 1.1 实验动物 | 第45页 |
| 1.2 主要药品与试剂 | 第45-46页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第46-47页 |
| 2. 实验方法 | 第47-52页 |
| 2.1 动物分组 | 第47页 |
| 2.2 模型制备与给药 | 第47-48页 |
| 2.3 脑组织采集 | 第48页 |
| 2.4 TUNEL凋亡检测 | 第48-49页 |
| 2.5 免疫组织化学(免疫荧光法) | 第49页 |
| 2.6 Western blot（蛋白质免疫印迹）法检测中脑黑质Wntl、GSK-3β、p-GSK-3β、Caspase-3、Bcl-xL的蛋白表达 | 第49-50页 |
| 2.7 RT-PCR(逆转录多聚合酶链反应)法检测中脑黑质Wntl、β-cateuin和GSK-3β的mRNA表达 | 第50-52页 |
| 2.8 统计学处理 | 第52页 |
| 结果 | 第52-60页 |
| 1. 人参皂苷Rg1对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑黑质细胞凋亡的影响 | 第52-53页 |
| 2.人参皂苷Rgl对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑凋亡蛋白Caspase-3、Bd-xL表达水平的影响 | 第53-54页 |
| 3. 人参皂苷Rg1对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑黑质Wnt1、β-catenin、GSK-3β和p-GSK-3β的蛋白表达水平影响 | 第54-56页 |
| 4. 人参皂苷Rg1对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑黑质Wnt1、β-catenin和GSK-3β的mRNA表达水平影响 | 第56-57页 |
| 5. 人参皂苷Rg1对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑黑质β-catenin的免疫荧光表达水平影响 | 第57-58页 |
| 6. 人参皂苷Rg1对MPTP诱导的帕金森病小鼠中脑黑质GSK-3 β的免疫荧光表达水平影响 | 第58-60页 |
| 讨论 | 第60-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 第三部分 人参皂苷Rgl在MPP~+诱导的帕金森病PC12细胞模型中通过Wnt/β-catenin信号通路起保护作用 | 第63-84页 |
| 材料和方法 | 第64-73页 |
| 1. 实验材料 | 第64-66页 |
| 1.1 细胞 | 第64页 |
| 1.2 主要药品与试剂 | 第64-65页 |
| 1.3 主要仪器和设备 | 第65-66页 |
| 2. 实验方法 | 第66-73页 |
| 2.1 细胞实验分组 | 第66-67页 |
| 2.2 细胞培养及给药模型构建 | 第67-68页 |
| 2.3 CKK-8( cell counting kit-8)检测细胞存活率 | 第68页 |
| 2.4 TUNEL凋亡检测 | 第68-69页 |
| 2.5 免疫组织化学(免疫荧光法) | 第69页 |
| 2.6 Western blot (蛋白质免疫印迹）法检测 PC12 细胞 Wntl、β-catenin、GSK-3β、p-GSK-3β、Caspase-3、Bcl-xL 的蛋白表达 | 第69-71页 |
| 2.7 RT-PCR(逆转录多聚合酶链反应)法检测中脑黑质Wnt 1、β-catenin和GSK-3β的mRNA表达 | 第71-73页 |
| 2.8 统计学处理 | 第73页 |
| 结果 | 第73-81页 |
| 1.人参息苷Rgl对MPP~+诱导的PC12细胞的细胞活性的影响以及筛选出Rgl作用的最佳浓度和作用时间。 | 第73-74页 |
| 2.人参皂苷Rgl对MPP~+诱导的PC12细胞的细胞凋亡数量的影响以及DKK1阻止Rgl的保护作用。 | 第74-75页 |
| 3.人参皂苷Rgl对MPP~+诱导的PC12细胞的凋亡蛋白Caspase-3、抗凋亡蛋白Bcl-xL表达水平的影响以及DKK1阻止Rgl的保护作用 | 第75-77页 |
| 4. 人参皂苷Rg1对MPP~+诱导的PC12细胞的Wnt1、β-catenin、GSK-3β和β-GSK-3β的蛋白表达水平影响以及DKK1阻止Rg1的保护作用 | 第77-78页 |
| 5. 人参皂苷Rg1对MPP~+诱导的PC12细胞的Wnt1、β-catenin和GSK-3β的mRNA表达水平影响以及DKK1阻止Rg1的保护作用 | 第78-79页 |
| 6. 人参皂苷Rg1对MPP~+诱导的PC12细胞的β-catenin的免疫荧光表达水平影响以及DKK1阻止Rg1的保护作用 | 第79-80页 |
| 7. 人参皂苷Rg1对MPP~+诱导的PC12细胞的GSK-3β的免疫荧光表达水平影响以及DKK1阻止Rg1的保护作用 | 第80-81页 |
| 讨论 | 第81-83页 |
| 结论 | 第83-84页 |
| 总结 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-92页 |
| 综述 | 第92-106页 |
| 参考文献 | 第98-106页 |
| 附录 | 第106-107页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
