| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 缩略词 | 第7-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-20页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 四种农产品中主要的抗氧化成分 | 第13-14页 |
| 1.2.1 水溶性抗氧化成分 | 第13-14页 |
| 1.2.2 脂溶性抗氧化成分 | 第14页 |
| 1.3 农产品间的抗氧化相互作用的评价方法 | 第14-16页 |
| 1.3.1 加和法 | 第14页 |
| 1.3.2 直接比较法 | 第14-15页 |
| 1.3.3 响应曲面法 | 第15页 |
| 1.3.4 等辐射分析法 | 第15-16页 |
| 1.4 抗氧化相互作用的现状 | 第16-18页 |
| 1.5 本课题研究的目的、意义及主要内容 | 第18-20页 |
| 1.5.1 课题来源 | 第18页 |
| 1.5.2 研究价值与意义 | 第18页 |
| 1.5.3 主要研究内容 | 第18-20页 |
| 第2章 茄子和紫薯花色苷提取优化的工艺研究 | 第20-39页 |
| 2.1 引言 | 第20-21页 |
| 2.2 试验材料与设备 | 第21页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第21页 |
| 2.2.2 仪器设备 | 第21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.3.1 试验材料预处理 | 第21页 |
| 2.3.2 提取花色苷流程 | 第21页 |
| 2.3.3 花色苷含量测定 | 第21-22页 |
| 2.3.4 不同溶剂提取的实验比较 | 第22页 |
| 2.3.5 单因素实验 | 第22页 |
| 2.3.6 响应面法因素水平设计 | 第22-23页 |
| 2.4 紫薯花色苷提取优化结果与分析 | 第23-30页 |
| 2.4.1 不同溶剂提取对紫薯花色苷含量的影响 | 第23页 |
| 2.4.2 单因素实验 | 第23-26页 |
| 2.4.2.1 料液比对紫薯花色苷提取的影响 | 第23-24页 |
| 2.4.2.2 乙醇浓度对紫薯花色苷提取的影响 | 第24-25页 |
| 2.4.2.3 超声波功率对紫薯花色苷提取的影响 | 第25页 |
| 2.4.2.4 超声波时间对紫薯花色苷提取的影响 | 第25-26页 |
| 2.4.3 响应面 | 第26-30页 |
| 2.4.3.1 模型建立与显著性检验 | 第26-27页 |
| 2.4.3.2 方差分析及显著性检验 | 第27-29页 |
| 2.4.3.3 最优工艺条件确定与模型验证 | 第29-30页 |
| 2.5 茄子花色苷提取优化结果与分析 | 第30-37页 |
| 2.5.1 单因素实验 | 第30-33页 |
| 2.5.1.1 超声波时间对茄子花色苷提取的影响 | 第30-31页 |
| 2.5.1.2 提取剂浓度对茄子花色苷提取的影响 | 第31页 |
| 2.5.1.3 超声波功率对茄子花色苷提取的影响 | 第31-32页 |
| 2.5.1.4 液料比对茄子皮花色苷提取的影响 | 第32-33页 |
| 2.5.2 响应面分析 | 第33-37页 |
| 2.5.2.1 Box-Behnken试验设计 | 第33-34页 |
| 2.5.2.2 方差分析及显著性检验 | 第34-37页 |
| 2.5.2.3 最优工艺条件确定与模型验证 | 第37页 |
| 2.6 讨论 | 第37-38页 |
| 2.6.1 超声波辅助提取花色苷具有高效、快速等优点 | 第37页 |
| 2.6.2 响应曲面法优化工艺具有精准、计算简便等优点 | 第37-38页 |
| 2.7 本章小结 | 第38-39页 |
| 第3章 农产品中主要植物化学物的结构表征 | 第39-51页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 试验材料与设备 | 第39-40页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第39页 |
| 3.2.2 仪器设备 | 第39-40页 |
| 3.3 实验方法 | 第40-42页 |
| 3.3.1 植物化学物提取 | 第40页 |
| 3.3.2 HPLC测定农产品中主要植物化学物成分含量 | 第40-41页 |
| 3.3.3 高效液相三重四级杆串联质谱（HPLC-ESI-MS）鉴定 | 第41-42页 |
| 3.4 实验结果 | 第42-48页 |
| 3.4.1 茄子和紫薯花色苷成分鉴定 | 第42-46页 |
| 3.4.2 植物化学物含量测定 | 第46-48页 |
| 3.5 讨论 | 第48-49页 |
| 3.5.1 液质联用（LC-MS）对天然产物成分的结构鉴定是一种快速有效的方法 | 第48-49页 |
| 3.5.2 飞燕草素3对香豆酰基-芦丁糖苷5葡萄糖苷是茄子中主要花色苷成分，可能与其总抗氧化活性密切相关 | 第49页 |
| 3.6 小结 | 第49-51页 |
| 第4章 不同深色农产品间抗氧化相互作用的评价 | 第51-66页 |
| 4.1 引言 | 第51-52页 |
| 4.2 试验材料与设备 | 第52页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第52页 |
| 4.2.2 设备 | 第52页 |
| 4.3 实验方法 | 第52-54页 |
| 4.3.1 果蔬样品预处理 | 第52页 |
| 4.3.2 植物化学物提取 | 第52-53页 |
| 4.3.3 植物化学物的含量测定 | 第53页 |
| 4.3.4 抗氧化活性测定 | 第53-54页 |
| 4.3.5 抗氧化理论值及协同率的计算 | 第54页 |
| 4.3.6 等辐射分析法 | 第54页 |
| 4.4 实验结果 | 第54-62页 |
| 4.4.1 植物化学物成分与抗氧化活性 | 第54-58页 |
| 4.4.2 农产品提取物组合的抗氧化活性及抗氧化相互作用关系 | 第58-62页 |
| 4.5 讨论 | 第62-65页 |
| 4.5.1 等辐射分析法是一种直观地评价农产品间的抗氧化相互作用关系的方法 | 第62页 |
| 4.5.2 相同农产品提取物不同比例混合后，抗氧化协同作用存在较大差异 | 第62-63页 |
| 4.5.3 农产品间抗氧化相互作用与所含植物化学物具有密切关系 | 第63页 |
| 4.5.4 农产品提取物组合间抗氧化相互作用的可能机理 | 第63-65页 |
| 4.6 小结 | 第65-66页 |
| 第5章 深色农产品提取物对H9c2细胞的协同保护作用 | 第66-75页 |
| 5.1 引言 | 第66页 |
| 5.2 试剂与实验设备 | 第66-67页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第66-67页 |
| 5.2.2 实验设备 | 第67页 |
| 5.3 实验方法 | 第67-69页 |
| 5.3.1 主要试剂的配制 | 第67-68页 |
| 5.3.2 细胞培养及传代 | 第68页 |
| 5.3.3 DMSO对H9c2细胞的毒性试验 | 第68页 |
| 5.3.4 H_2O_2对H9c2细胞的毒性试验 | 第68页 |
| 5.3.5 农产品提取物及农产品组合对H9c2细胞活力的影响 | 第68-69页 |
| 5.3.6 农产品提取物及组合对H_2O_2损伤H9c2细胞的保护作用 | 第69页 |
| 5.4 结果 | 第69-72页 |
| 5.4.1 DMSO对H9c2细胞的毒性试验 | 第69页 |
| 5.4.2 农产品提取物对H9c2细胞活力的影响 | 第69-71页 |
| 5.4.3 H_2O_2对H9c2细胞活力的影响 | 第71-72页 |
| 5.4.4 农产品提取物及组合对H_2O_2损伤H9c2细胞的保护作用 | 第72页 |
| 5.5 讨论 | 第72-74页 |
| 5.5.1 不同农产品提取物组合对H_2O_2损伤H9c2细胞有协同保护作用 | 第72-73页 |
| 5.5.2 不同农产品对细胞的协同保护作用可能与其富含的植物化学物密切相关 | 第73-74页 |
| 5.6 小结 | 第74-75页 |
| 第6章 结论与展望 | 第75-77页 |
| 6.1 结论 | 第75-76页 |
| 6.1.1 茄子和紫薯的花色苷提取方法的优化 | 第75页 |
| 6.1.2 农产品中主要植物化学物的结构表征 | 第75页 |
| 6.1.3 四种农产品提取物间的抗氧化相互关系 | 第75-76页 |
| 6.1.4 农产品提取物组合对H_2O_2损伤H9c2细胞的协同保护作用 | 第76页 |
| 6.2 进一步工作方向 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-85页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第85页 |
