| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 毛囊的周期性变化及其在绒山羊上的研究进展 | 第12-16页 |
| 1.1 引言 | 第12页 |
| 1.2 毛囊的基本结构与特点 | 第12-13页 |
| 1.3 毛囊的周期性变化 | 第13页 |
| 1.4 毛囊周期性变化的分子调控 | 第13-14页 |
| 1.5 绒山羊毛囊周期性变化研究 | 第14-15页 |
| 1.6 毛乳头与毛囊的生长发育 | 第15-16页 |
| 第二章 microRNA的特征及在绒山羊上的研究进展 | 第16-22页 |
| 2.1 miRNA的生物合成与作用机制 | 第16-17页 |
| 2.2 miRNA的研究方法与应用 | 第17-18页 |
| 2.3 家畜中miRNA的研究进展 | 第18-19页 |
| 2.4 miRNA在皮肤与毛囊发育中的研究 | 第19-21页 |
| 2.5 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 第三章 绒山羊次级毛乳头细胞培养条件优化研究 | 第22-31页 |
| 3.1 材料与方法 | 第22页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第22页 |
| 3.2 试验方法 | 第22-24页 |
| 3.2.1 β2、ITS和EGF单独添加最佳浓度的确定 | 第22-23页 |
| 3.2.2 毛乳头细胞培养液优化及培养效果比较 | 第23页 |
| 3.2.3 皮肤样品的采集及预处理 | 第23页 |
| 3.2.4 毛囊分离及次级毛乳头的剥离、培养 | 第23页 |
| 3.2.5 次级毛乳头细胞的传代 | 第23-24页 |
| 3.2.6 次级毛乳头细胞的冻存与复苏 | 第24页 |
| 3.2.7 毛乳头细胞形态学观察与免疫荧光鉴定 | 第24页 |
| 3.2.8 次级毛乳头细胞生长曲线的绘制 | 第24页 |
| 3.2.9 次级毛乳头细胞活率检测 | 第24页 |
| 3.3 结果与分析 | 第24-29页 |
| 3.3.1 毛乳头的剥离 | 第24-25页 |
| 3.3.2 β2、ITS和EGF单独添加最佳浓度及各组培养液的确定 | 第25页 |
| 3.3.3 毛乳头细胞的体外培养 | 第25-27页 |
| 3.3.4 次级毛乳头细胞活率检测 | 第27页 |
| 3.3.5 次级毛乳头细胞的传代、冻存与复苏 | 第27-28页 |
| 3.3.6 毛乳头细胞免疫荧光鉴定 | 第28-29页 |
| 3.4 讨论 | 第29-30页 |
| 3.4.1 毛乳头细胞培养液优化及细胞培养与鉴定 | 第29-30页 |
| 3.5 小结 | 第30-31页 |
| 第四章 miR-206对毛囊周期变化调控研究 | 第31-36页 |
| 4.1 材料与方法 | 第31页 |
| 4.1.1 试验仪器与试剂 | 第31页 |
| 4.2 试验方法 | 第31-33页 |
| 4.2.1 miR-206转染毛乳头细胞 | 第31-32页 |
| 4.2.2 细胞总RNA提取 | 第32页 |
| 4.2.3 反转录cDNA | 第32页 |
| 4.2.4 实时荧光定量PCR(Real-time qPCR) | 第32页 |
| 4.2.5 miR-206转染毛乳头细胞后毛囊周期变化相关基因的检测 | 第32-33页 |
| 4.3 结果与分析 | 第33-35页 |
| 4.3.1 miR-206感染次级毛囊毛乳头细胞 | 第33-34页 |
| 4.3.2 细胞总RNA电泳 | 第34页 |
| 4.3.3 miR-206感染毛乳头细胞后毛囊周期变化相关基因的检测 | 第34-35页 |
| 4.4 讨论 | 第35页 |
| 4.4.1 miR-206转染毛乳头细胞及毛囊发育相关基因mRNA的表达分析 | 第35页 |
| 4.5 小结 | 第35-36页 |
| 第五章 结论 | 第36-37页 |
| 5.1 研究结论 | 第36页 |
| 5.2 研究创新点 | 第36页 |
| 5.3 下一步研究建议 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 附录 | 第42-47页 |
| 缩略词表 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-50页 |
| 作者简介 | 第50页 |
