| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-18页 |
| 1.1 猪带绦虫概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 猪带绦虫流行病学 | 第12页 |
| 1.1.2 猪囊尾蚴疫苗研究 | 第12-13页 |
| 1.2 胰岛素信号通路的概述 | 第13-17页 |
| 1.2.1 胰岛素及胰岛素受体家族 | 第13-14页 |
| 1.2.2 胰岛素信号通路在寄生虫中的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第17-18页 |
| 第二章 猪带绦虫胰岛素受体基因的鉴定与分析 | 第18-29页 |
| 2.1 试验材料 | 第18页 |
| 2.1.1 虫体、菌种和试剂 | 第18页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第18页 |
| 2.2 试验方法 | 第18-21页 |
| 2.2.1 猪带绦虫成虫总RNA的提取 | 第18-19页 |
| 2.2.2 cDNA合成 | 第19页 |
| 2.2.3 猪带绦虫胰岛素受体基因的扩增 | 第19-20页 |
| 2.2.4 猪带绦虫胰岛素受体基因的序列分析 | 第20-21页 |
| 2.3 实验结果 | 第21-27页 |
| 2.3.1 猪带绦虫胰岛素受体基因的克隆 | 第21页 |
| 2.3.2 猪带绦虫胰岛素受体的序列分析 | 第21-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-29页 |
| 第三章 TsIR-1316和TsIR-4810 LBD区的原核表达及组织分布 | 第29-37页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第29页 |
| 3.1.1 实验动物及主要试剂 | 第29页 |
| 3.1.2 血清 | 第29页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-32页 |
| 3.2.1 重组质粒的构建及鉴定 | 第29-30页 |
| 3.2.2 TsIRs-LBD的原核表达 | 第30页 |
| 3.2.3 重组TsIRs-LBD蛋白的纯化 | 第30页 |
| 3.2.4 TsIRs-LBD的Western-blotting分析 | 第30-31页 |
| 3.2.5 免疫组化 | 第31-32页 |
| 3.3 结果 | 第32-35页 |
| 3.3.1 重组表达载体的构建与鉴定 | 第32-33页 |
| 3.3.2 TsIRs-LBD的原核表达及纯化 | 第33-34页 |
| 3.3.3 TsIRs-LBD的Western-blotting分析 | 第34页 |
| 3.3.4 TsIR-1316和TsIR-4810的组织分布 | 第34-35页 |
| 3.4 讨论 | 第35-37页 |
| 第四章 TsIRs-LBD抗体对囊尾蚴的体外作用研究 | 第37-43页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第37页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第37页 |
| 4.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 4.2.1 豆状囊尾蚴的分离与分组培养 | 第37-38页 |
| 4.2.2 TsIRs-LBD抗体对豆状囊尾蚴的体外作用 | 第38-39页 |
| 4.3 实验结果 | 第39-41页 |
| 4.3.1 虫体游离葡萄糖含量检测结果 | 第39-40页 |
| 4.3.2 磷酸化水平检测 | 第40页 |
| 4.3.3 糖原染色（PSA） | 第40-41页 |
| 4.4 讨论 | 第41-43页 |
| 第五章 重组TsIRs-LBD的免疫保护效果评价 | 第43-49页 |
| 5.1 材料和试剂 | 第43页 |
| 5.1.1 主要试剂 | 第43页 |
| 5.1.2 实验动物 | 第43页 |
| 5.2 实验方法 | 第43-45页 |
| 5.2.1 抗原的制备 | 第43页 |
| 5.2.2 实验动物的分组与免疫接种 | 第43-44页 |
| 5.2.3 血清抗体的间接Elisa检测 | 第44页 |
| 5.2.4 实验兔IL-4 和INF-γ的检测 | 第44-45页 |
| 5.2.5 TsIRs-LBD的免疫保护效果 | 第45页 |
| 5.3 结果 | 第45-47页 |
| 5.3.1 实验兔血清抗体的检测 | 第45-46页 |
| 5.3.2 实验兔IL-4 检测 | 第46页 |
| 5.3.3 实验兔INF-γ的检测 | 第46-47页 |
| 5.3.4 兔虫体计数及减虫率分析 | 第47页 |
| 5.4 讨论 | 第47-49页 |
| 第六章 全文结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者简介 | 第57页 |
