| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 缩写 | 第14-15页 |
| 第一章 研究背景与立题依据 | 第15-30页 |
| 1.1 研究背景 | 第15-27页 |
| 1.1.1 细菌胞外多糖 | 第16-24页 |
| 1.1.2 海洋细菌胞外多糖 | 第24-27页 |
| 1.2 立题依据与研究内容 | 第27-30页 |
| 1.2.1 立题依据 | 第27-28页 |
| 1.2.2 研究内容 | 第28-30页 |
| 第二章 北极海洋细菌中胞外多糖产生菌的筛选和鉴定 | 第30-41页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 材料、试剂与仪器 | 第30-32页 |
| 2.2.1 实验菌株 | 第30页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.4 培养基 | 第32页 |
| 2.3 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.3.1 苯酚-硫酸法制作总糖含量标准曲线 | 第32页 |
| 2.3.2 样品中总糖含量的测定 | 第32-33页 |
| 2.3.3 刚果红平板法和液体发酵法筛选高产胞外多糖菌株 | 第33页 |
| 2.3.4 PCR扩增菌株SM1127的16S rRNA基因序列 | 第33-34页 |
| 2.3.5 Neighbor-joining法构建菌株SM1127的系统发育树 | 第34-35页 |
| 2.4 结果与分析 | 第35-39页 |
| 2.4.1 总糖含量标准曲线 | 第35页 |
| 2.4.2 高产胞外多糖菌株的筛选 | 第35-37页 |
| 2.4.3 菌株SM1127的初步鉴定 | 第37-39页 |
| 2.5 讨论 | 第39-41页 |
| 第三章 Polaribacter sp. SM1127胞外多糖的发酵条件优化 | 第41-57页 |
| 3.1 引言 | 第41-42页 |
| 3.2 材料、试剂与仪器 | 第42页 |
| 3.2.1 实验菌株 | 第42页 |
| 3.2.2 主要试剂与药品 | 第42页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第42页 |
| 3.2.4 培养基 | 第42页 |
| 3.3 实验方法 | 第42-49页 |
| 3.3.1 单因子法优化胞外多糖的发酵条件 | 第42-44页 |
| 3.3.2 响应面法优化胞外多糖的发酵条件 | 第44-48页 |
| 3.3.3 菌株SM1127的5L罐补料发酵 | 第48-49页 |
| 3.4 结果与分析 | 第49-56页 |
| 3.4.1 不同培养条件对胞外多糖产量的影响 | 第49-51页 |
| 3.4.2 最优产糖条件的探究 | 第51-55页 |
| 3.4.3 菌株SM1127的5L罐补料发酵 | 第55-56页 |
| 3.5 讨论 | 第56-57页 |
| 第四章 Polaribacter sp. SM1127胞外多糖的分离纯化和结构解析 | 第57-69页 |
| 4.1 引言 | 第57页 |
| 4.2 材料、试剂与仪器 | 第57-59页 |
| 4.2.1 实验菌株 | 第57页 |
| 4.2.2 主要试剂与药品 | 第57-58页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第58页 |
| 4.2.4 培养基 | 第58-59页 |
| 4.3 实验方法 | 第59-61页 |
| 4.3.1 乙醇沉淀法提取胞外多糖 | 第59页 |
| 4.3.2 复合蛋白酶法去除胞外多糖中的蛋白质 | 第59页 |
| 4.3.3 DEAE-Sepharose Fast Flow阴离子交换层析 | 第59页 |
| 4.3.4 Sepharose 4B凝胶层析 | 第59-60页 |
| 4.3.5 纯化的胞外多糖的纯度检验 | 第60页 |
| 4.3.6 气相色谱-质谱联用法检测胞外多糖的糖基组成 | 第60页 |
| 4.3.7 气相色谱-质谱联用法检测胞外多糖的糖苷键连接类型 | 第60-61页 |
| 4.3.8 TSK Gel G5000PW分子筛层析法检测胞外多糖的分子量 | 第61页 |
| 4.4 结果与分析 | 第61-67页 |
| 4.4.1 胞外多糖的分离纯化 | 第61-64页 |
| 4.4.2 胞外多糖的结构解析 | 第64-67页 |
| 4.5 讨论 | 第67-69页 |
| 第五章 Polaribacter sp. SM1127胞外多糖的流变学性质研究 | 第69-77页 |
| 5.1 引言 | 第69页 |
| 5.2 材料、试剂与仪器 | 第69-70页 |
| 5.2.1 实验样品 | 第69页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第69-70页 |
| 5.2.3 主要仪器 | 第70页 |
| 5.3 实验方法 | 第70-71页 |
| 5.3.1 不同浓度胞外多糖溶液粘度的测定 | 第70页 |
| 5.3.2 不同浓度胞外多糖溶液在不同剪切速率下粘度的测定 | 第70页 |
| 5.3.3 不同浓度胞外多糖溶液在不同温度下粘度的测定 | 第70页 |
| 5.3.4 胞外多糖溶液在不同pH下粘度的测定 | 第70-71页 |
| 5.3.5 胞外多糖溶液在不同盐及盐浓度下粘度的测定 | 第71页 |
| 5.3.6 胞外多糖溶液触变性的测定 | 第71页 |
| 5.4 结果与分析 | 第71-76页 |
| 5.4.1 胞外多糖的浓度对溶液粘度的影响 | 第71-72页 |
| 5.4.2 剪切速率对不同浓度的胞外多糖溶液粘度的影响 | 第72-73页 |
| 5.4.3 温度对不同浓度的胞外多糖溶液粘度的影响 | 第73页 |
| 5.4.4 pH对胞外多糖溶液粘度的影响 | 第73-74页 |
| 5.4.5 盐及盐浓度对胞外多糖溶液粘度的影响 | 第74-75页 |
| 5.4.6 胞外多糖溶液的触变性 | 第75-76页 |
| 5.5 讨论 | 第76-77页 |
| 第六章 Polaribacter sp. SM1127胞外多糖的应用潜力研究 | 第77-97页 |
| 6.1 引言 | 第77-78页 |
| 6.2 材料、试剂与仪器 | 第78-79页 |
| 6.2.1 实验样品 | 第78页 |
| 6.2.2 主要试剂与药品 | 第78-79页 |
| 6.2.3 主要仪器 | 第79页 |
| 6.3 实验方法 | 第79-85页 |
| 6.3.1 胞外多糖的KM小鼠急性经口毒性实验 | 第79-80页 |
| 6.3.2 胞外多糖的日本白色大耳兔皮肤刺激性实验 | 第80-82页 |
| 6.3.3 胞外多糖在81%和43%相对湿度下吸湿率的测定 | 第82页 |
| 6.3.4 胞外多糖在干硅胶环境中保湿率的测定 | 第82-83页 |
| 6.3.5 胞外多糖对有机自由基(DPPH·)清除率的测定 | 第83页 |
| 6.3.6 胞外多糖对羟自由基(·OH)清除率的测定 | 第83-84页 |
| 6.3.7 胞外多糖对超氧阴离子自由基(O_2~-·)清除率的测定 | 第84页 |
| 6.3.8 流式细胞仪检测低温下的不同胞外多糖浓度中HDF的存活率 | 第84-85页 |
| 6.4 结果与分析 | 第85-94页 |
| 6.4.1 胞外多糖的安全性评价 | 第85-89页 |
| 6.4.2 胞外多糖的吸湿、保湿效果 | 第89-91页 |
| 6.4.3 胞外多糖的抗氧化效果 | 第91-93页 |
| 6.4.4 胞外多糖对HDF的低温保护作用 | 第93-94页 |
| 6.5 讨论 | 第94-97页 |
| 全文总结与展望 | 第97-100页 |
| 1 本论文取得的创新性结果 | 第97-98页 |
| 2 本论文存在的问题及展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-109页 |
| 致谢 | 第109-111页 |
| 在读期间发表的论文目录 | 第111-113页 |
| 附件 | 第113-122页 |
