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嗜线虫致病杆菌Txp40蛋白毒素的分离纯化及作用靶标的研究

摘要第4-5页
Abstract第5页
第一章 文献综述第8-13页
    1.1 昆虫病原线虫及共生细菌复合体第8-9页
    1.2 昆虫病原线虫共生菌简介第9页
    1.3 昆虫病原线虫共生菌的型变第9-10页
    1.4 昆虫病原线虫共生菌杀虫毒素第10-12页
        1.4.1 Tc 杀虫毒素蛋白复合物第10-11页
        1.4.2 Txp40 杀虫蛋白第11-12页
    1.5 本实验的目的及意义第12-13页
第二章 TXP40 杀虫毒素的分离纯化第13-20页
    2.1 材料第13-15页
        2.1.1 实验材料:第13页
        2.1.2 实验药品第13页
        2.1.3 培养基第13-14页
        2.1.4 native-PAGE 电泳溶液配制第14页
        2.1.5 抗原抗体点杂交溶液配制第14页
        2.1.6 实验仪器第14-15页
    2.2 实验方法第15-16页
        2.2.1 XnHB310 菌株发酵液的制备第15页
        2.2.2 XnHB310 胞内总蛋白的提取第15页
        2.2.3 native-PAGE 蛋白电泳切胶回收第15-16页
        2.2.4 蛋白质条带的定位及蛋白样品的洗脱第16页
        2.2.5 回收蛋白对大蜡螟的血腔注射活性第16页
        2.2.6 回收蛋白与 Txp40 抗体的点杂交第16页
    2.3 结果与分析第16-19页
        2.3.1 分离纯化的 Txp40 蛋白及 SDS-PAGE 检测第16-18页
        2.3.2 纯化 Txp40 蛋白大蜡螟血腔注射活性测定第18页
        2.3.3 Txp40 抗体的点杂交检测结果第18-19页
    2.4 讨论第19-20页
第三章 TXP40 基因的原核表达第20-30页
    3.1 材料第20-21页
        3.1.1 供试菌株和质粒载体第20页
        3.1.2 主要试剂和仪器第20页
        3.1.3 溶液配制第20-21页
    3.2 实验方法第21-25页
        3.2.1 引物设计及 PCR 扩增第21页
        3.2.2 质粒双酶切第21-22页
        3.2.3 目的基因与 pET-28a 载体连接转化第22页
        3.2.4 阳性克隆的筛选第22-23页
        3.2.5 重组蛋白诱导表达第23页
        3.2.6 Western-blotting第23-24页
        3.2.7 重组 Txp40 蛋白纯化第24页
        3.2.8 重组 Txp40 蛋白的杀虫活性的测定第24-25页
    3.3 结果与分析第25-29页
        3.3.1 带有双酶切位点的 txp40 的 PCR 扩增第25页
        3.3.2 构建的重组表达载体 pET28a-txp40 及鉴定第25-26页
        3.3.3 txp40 基因在大肠杆菌中的表达第26-27页
        3.3.4 重组 Txp40 蛋白的 Western bloting第27页
        3.3.5 重组 Txp40 蛋白的纯化第27页
        3.3.6 重组 Txp40 蛋白的杀虫活性第27-29页
    3.4 讨论第29-30页
第四章 TXP40 蛋白毒素作用靶标的研究第30-40页
    4.1 材料第30-31页
        4.1.1 实验药品第30页
        4.1.2 供试昆虫第30页
        4.1.3 实验仪器第30页
        4.1.4 溶液配制第30-31页
    4.2 实验方法第31-33页
        4.2.1 大蜡螟幼虫总蛋白提取第31页
        4.2.2 大蜡螟幼虫总蛋白与 Txp40 毒素免疫共沉淀第31-32页
        4.2.3 洗脱第32页
        4.2.4 捕获蛋白的鉴定第32-33页
    4.3 结果与分析第33-39页
        4.3.1 提取的大蜡螟幼虫总蛋白第33页
        4.3.2 捕捉的蛋白第33-39页
    4.4 讨论第39-40页
第五章 结论第40-41页
参考文献第41-47页
在读期间发表的学术论文第47-48页
作者简介第48-49页
致谢第49-50页

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