| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第9-26页 |
| 1.1 脂肪组织和脂肪细胞 | 第9-11页 |
| 1.1.1 脂肪组织和脂肪细胞的构成 | 第9-10页 |
| 1.1.2 脂肪组织和脂肪细胞的起源和发育 | 第10页 |
| 1.1.3 脂肪因子 | 第10-11页 |
| 1.2 脂肪的分解过程及相关脂肪酶 | 第11-21页 |
| 1.2.1 脂肪的动员 | 第11-13页 |
| 1.2.2 甘油的代谢 | 第13页 |
| 1.2.3 脂肪酸的 β 氧化 | 第13-18页 |
| 1.2.4 其他调节脂肪分解的基因 | 第18-21页 |
| 1.3 脂肪分解的信号机制 | 第21-23页 |
| 1.3.1 兴奋性 G 蛋白偶联受体通路 | 第21页 |
| 1.3.2 抑制性 G 蛋白偶联受体通路 | 第21页 |
| 1.3.3 酪氨酸激酶受体通路 | 第21-22页 |
| 1.3.4 Gq/PLC/PKC 通路 | 第22页 |
| 1.3.5 JAK‐STATs 通路 | 第22-23页 |
| 1.4 脂肪分解代谢的研究方法 | 第23-24页 |
| 1.5 有待解决的问题 | 第24页 |
| 1.6 本研究的内容 | 第24-25页 |
| 1.7 本研究的意义 | 第25-26页 |
| 2 材料与方法 | 第26-32页 |
| 2.1 试验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.1 生物信息学分析材料 | 第26页 |
| 2.1.2 提取总 RNA 试验材料 | 第26页 |
| 2.1.3 主要的试验试剂 | 第26页 |
| 2.1.4 试剂的配制 | 第26-27页 |
| 2.2 试验方法 | 第27-32页 |
| 2.2.1 调控网络的构建 | 第27页 |
| 2.2.2 生物信息学分析 | 第27-28页 |
| 2.2.3 主要的试验仪器 | 第28页 |
| 2.2.4 总 RNA 的提取 | 第28-29页 |
| 2.2.5 RNA 纯度和质量的检测 | 第29页 |
| 2.2.6 RNase free DNaseⅠ处理总 RNA | 第29页 |
| 2.2.7 引物设计 | 第29-30页 |
| 2.2.8 PCR 鉴定 gDNA | 第30页 |
| 2.2.9 反转录成 cDNA | 第30页 |
| 2.2.10 Real‐time PCR | 第30-31页 |
| 2.2.11 数据处理 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-40页 |
| 3.1 脂肪降解通路中主要基因的网络构建 | 第32-34页 |
| 3.1.1 猪脂肪分解调控网络 | 第32页 |
| 3.1.2 G 蛋白偶联受体介导的调控通路 | 第32-34页 |
| 3.2 CB1/ PPARΓ2/HSL 通路中蛋白质的生物信息学分析 | 第34-35页 |
| 3.2.1 蛋白质的理化性质 | 第34页 |
| 3.2.2 蛋白质的信号肽和亚细胞定位 | 第34-35页 |
| 3.2.3 蛋白质的二级结构 | 第35页 |
| 3.3 CB1 调控 HSL 表达研究 | 第35-40页 |
| 3.3.1 RNA 纯度和质量的检测结果 | 第35页 |
| 3.3.2 反应曲线 | 第35-37页 |
| 3.3.3 CB1、PPARγ2 和 HSL 基因的组织表达谱 | 第37-38页 |
| 3.3.4 猪不同体重阶段 CB1、PPARγ2 和 HSL 基因的表达趋势 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-44页 |
| 4.1 猪脂肪分解通路中的基因网络 | 第40页 |
| 4.2 脂解通路之间的关系 | 第40-41页 |
| 4.3 CB1/ PPARΓ2/HSL 通路的推测 | 第41-43页 |
| 4.3.1 CB1/ PPARγ2/HSL 通路中蛋白质的生物信息学分析 | 第41-42页 |
| 4.3.2 CB1 对 HSL 表达的调控 | 第42-43页 |
| 4.4 有待进一步研究的问题 | 第43-44页 |
| 5 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 缩略词表 | 第51-53页 |
| 在读期间发表的论文 | 第53-54页 |
| 作者简历 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
