| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8页 |
| 致谢 | 第10-11页 |
| 第一章 PEG化壳聚糖的合成和表征 | 第11-31页 |
| 1 前言 | 第11-15页 |
| 2 材料和仪器 | 第15-16页 |
| 2.1 材料 | 第15页 |
| 2.2 仪器 | 第15-16页 |
| 3 实验方法 | 第16-20页 |
| 3.1 mPEG琥珀酸单酯的合成 | 第16-17页 |
| 3.2 mPEG-Su-COONSu的合成 | 第17页 |
| 3.3 壳聚糖-聚乙二醇的合成 | 第17-18页 |
| 3.3.1 壳聚糖的纯化 | 第17页 |
| 3.3.2 粘度法测定壳聚糖的分子量 | 第17-18页 |
| 3.4 壳聚糖-聚乙二醇接枝物的合成 | 第18-19页 |
| 3.5 产物的表征 | 第19-20页 |
| 3.5.1 盐酸羟胺反应 | 第19页 |
| 3.5.2 产物的红外、核磁表征 | 第19页 |
| 3.5.3 PEG化壳聚糖的接枝率测定 | 第19-20页 |
| 4 结果与讨论 | 第20-31页 |
| 4.1 mPEG琥珀酸单酯 | 第20-21页 |
| 4.1.1 盐酸羟胺反应 | 第20页 |
| 4.1.2 FT-IR分析 | 第20-21页 |
| 4.2 mPEG-Su-COONSu | 第21-22页 |
| 4.2.1 FT-IR分析 | 第21页 |
| 4.2.2 ~(13)C NMR分析 | 第21-22页 |
| 4.3 壳聚糖-聚乙二醇接枝物 | 第22-26页 |
| 4.3.1 壳聚糖分子量 | 第22-23页 |
| 4.3.2 FT-IR分析 | 第23-25页 |
| 4.3.3 ~1H-NMR分析 | 第25-26页 |
| 4.4 PEG化壳聚糖的接枝率 | 第26-31页 |
| 第二章 PEG化壳聚糖在水中溶胀行为的研究 | 第31-41页 |
| 1 前言 | 第31-32页 |
| 2 材料和仪器 | 第32-33页 |
| 2.1 材料 | 第32页 |
| 2.2 仪器 | 第32-33页 |
| 3 实验方法 | 第33-34页 |
| 3.1 不同分子量、不同接枝率的PEG化壳聚糖的合成 | 第33页 |
| 3.1.1 mPEG琥珀酸单酯和mPEG-Su-COONSu的合成 | 第33页 |
| 3.1.2 不同分子量、不同接枝率的PEG化壳聚糖的合成 | 第33页 |
| 3.2 PEG化壳聚糖的溶胀度和溶解度的测定 | 第33-34页 |
| 3.3 浊度的测定 | 第34页 |
| 4 结果与讨论 | 第34-41页 |
| 4.1 不同分子量、不同接枝率的PEG化壳聚糖的合成及其分子量 | 第34-35页 |
| 4.2 PEG化壳聚糖的溶胀度和溶解度 | 第35-37页 |
| 4.3 浊度 | 第37-41页 |
| 第三章 PEGFP-N1质粒／PEG化壳聚糖自聚集纳米粒在HELA细胞上转染的初步研究 | 第41-57页 |
| 1 前言 | 第41-43页 |
| 2 材料和仪器 | 第43-44页 |
| 2.1 材料 | 第43-44页 |
| 2.2 仪器 | 第44页 |
| 3 实验方法 | 第44-49页 |
| 3.1 pEGFP-N1质粒的制备与验证 | 第44-48页 |
| 3.1.1 感受态细胞的制备 | 第44-45页 |
| 3.1.2 质粒碱裂解法 | 第45-46页 |
| 3.1.3 聚乙二醇沉淀纯化质粒DNA | 第46-48页 |
| 3.1.4 质粒的定量 | 第48页 |
| 3.2 PEG化的壳聚糖／DNA纳米粒的制备 | 第48页 |
| 3.3 PEG化壳聚糖／DNA纳米粒在Hela细胞体外转染 | 第48-49页 |
| 3.3.1 材料 | 第48-49页 |
| 3.3.2 Hela细胞的培养 | 第49页 |
| 3.3.3 细胞摄取 | 第49页 |
| 4 结果和讨论 | 第49-57页 |
| 4.1 pEGFP-N1质粒 | 第49-51页 |
| 4.2 PEG化的壳聚糖／DNA纳米粒 | 第51-52页 |
| 4.3 壳聚糖／DNA纳米粒在Hela细胞体外摄取 | 第52-57页 |
| 第四章 PEG化壳聚糖修饰的环孢素A纳米粒的制备及其物理化学性质的考察 | 第57-73页 |
| 1 前言 | 第57-58页 |
| 2 材料与仪器 | 第58-59页 |
| 2.1 材料 | 第58-59页 |
| 2.2 仪器 | 第59页 |
| 3 实验方法 | 第59-61页 |
| 3.1 分析方法的建立 | 第59-60页 |
| 3.1.1 检测波长的选择 | 第59页 |
| 3.1.2 流动相的选择 | 第59-60页 |
| 3.1.3 柱温的选择 | 第60页 |
| 3.1.4 HPLC标准曲线的建立 | 第60页 |
| 3.2 环孢素A纳米粒的制备 | 第60页 |
| 3.3 包封产率和载药量的测定 | 第60-61页 |
| 3.4 环孢素A纳米粒形态和粒径测定 | 第61页 |
| 3.5 体外释放的的研究 | 第61页 |
| 3.5.1 PBS溶液的配制 | 第61页 |
| 3.5.2 体外释放考察 | 第61页 |
| 4 结果与讨论 | 第61-73页 |
| 4.1 分析方法 | 第61-64页 |
| 4.1.1 检测波长 | 第61-62页 |
| 4.1.2 流动相 | 第62-63页 |
| 4.1.3 柱温 | 第63页 |
| 4.1.4 环孢素标准曲线 | 第63-64页 |
| 4.2 环孢素纳米粒 | 第64-66页 |
| 4.3 PEG化壳聚糖修饰的环孢素纳米粒的包封率和载药量 | 第66页 |
| 4.4 PEG化壳聚糖修饰的环孢素纳米粒的形态、粒径 | 第66-70页 |
| 4.5 PEG化壳聚糖修饰的环孢素纳米粒的体外释放 | 第70-73页 |
| 第五章 PEG化壳聚糖修饰的环孢素纳米粒家兔药动学研究 | 第73-83页 |
| 1 前言 | 第73-74页 |
| 2 材料与仪器 | 第74-75页 |
| 2.1 材料 | 第74页 |
| 2.2 仪器 | 第74-75页 |
| 3 实验方法 | 第75-77页 |
| 3.1 检测波长的选择 | 第75页 |
| 3.2 流动相的确定 | 第75页 |
| 3.3 血样的提取方法 | 第75页 |
| 3.4 标准曲线的测定 | 第75-76页 |
| 3.5 萃取回收率测定 | 第76页 |
| 3.6 回收试验和精密度的测定 | 第76页 |
| 3.7 家兔体内的药动学研究 | 第76-77页 |
| 4 结果和讨论 | 第77-83页 |
| 4.1 检测波长 | 第77-78页 |
| 4.2 流动相 | 第78-79页 |
| 4.3 血样的标准曲线和药物萃取回收率 | 第79页 |
| 4.4 回收率和精密度 | 第79-80页 |
| 4.5 家兔体内的药动学 | 第80-83页 |
| 第六章 结束语 | 第83-85页 |
| 综述 壳聚糖纳米粒的研究进展 | 第85-113页 |
| 作者简历 | 第113页 |
