| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第15-24页 |
| 1.1 类黄酮化合物的结构与分类 | 第16-17页 |
| 1.2 二氢查尔酮类的化学结构和性质 | 第17-18页 |
| 1.3 类黄酮的抗氧化以及其它生物活性 | 第18-19页 |
| 1.4 类黄酮的分离纯化技术与方法 | 第19-21页 |
| 1.5 类黄酮的生物合成途径 | 第21-24页 |
| 第2章 引言 | 第24-28页 |
| 2.1 研究的目的和意义 | 第24-26页 |
| 2.1.1 开发观赏海棠天然宝贵资源 | 第24页 |
| 2.1.2 开发观赏海棠类黄酮物质新用途 | 第24-25页 |
| 2.1.3 探究观赏海棠中二氢查尔酮在植物体内的合成代谢途径 | 第25-26页 |
| 2.2 研究的主要内容 | 第26-27页 |
| 2.3 研究思路和技术路线 | 第27-28页 |
| 第3章 观赏海棠不同组织器官中类黄酮物质的鉴定与品种差异 | 第28-48页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-30页 |
| 3.1.1 材料 | 第28页 |
| 3.1.2 试验试剂 | 第28页 |
| 3.1.3 试验主要仪器与设备 | 第28页 |
| 3.1.4 试验方法 | 第28-29页 |
| 3.1.5 试验数据处理 | 第29-30页 |
| 3.2 结果与分析 | 第30-46页 |
| 3.2.1 HPLC-MS分析鉴定海棠叶片中主要的类黄酮物质 | 第30-34页 |
| 3.2.2 HPLC-MS分析海棠花瓣中主要的类黄酮物质 | 第34-38页 |
| 3.2.3 HPLC-MS分析海棠果皮中主要的类黄酮物质 | 第38-42页 |
| 3.2.4 HPLC-MS分析海棠果肉中主要的类黄酮物质 | 第42-45页 |
| 3.2.5 UPLC-QTOF-MS分析海棠根中主要的类黄酮物质 | 第45-46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-47页 |
| 3.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第4章 观赏海棠叶片和果实中类黄酮物质的时空表达特点 | 第48-78页 |
| 4.1 材料与方法 | 第48-50页 |
| 4.1.1 材料 | 第48页 |
| 4.1.2 试验试剂 | 第48页 |
| 4.1.3 试验主要仪器与设备 | 第48页 |
| 4.1.4 试验方法 | 第48-49页 |
| 4.1.5 黄酮类化合物的定量分析 | 第49页 |
| 4.1.6 试验数据处理 | 第49-50页 |
| 4.2 结果与分析 | 第50-74页 |
| 4.2.1 叶片类黄酮各时期的时空表达特征及其多样性特征 | 第50-56页 |
| 4.2.3 果实类黄酮各时期的时空表达特征及其多样性特征 | 第56-69页 |
| 4.2.4 不同器官组织中的类黄酮化合物的综合差异比较 | 第69-74页 |
| 4.3 讨论 | 第74-76页 |
| 4.3.1 观赏海棠不同器官类黄酮组分的差异分析 | 第74页 |
| 4.3.2 观赏海棠叶片和果实中类黄酮组分的时空表达模式 | 第74页 |
| 4.3.3 观赏海棠叶片和果实中类黄酮组分的多样性特征 | 第74-75页 |
| 4.3.4 类黄酮化合物的代谢流分析 | 第75-76页 |
| 4.4 本章小结 | 第76-78页 |
| 第5章 观赏海棠类黄酮化合物的抗氧化特性 | 第78-87页 |
| 5.1 材料与方法 | 第78-80页 |
| 5.1.1 植物材料与试验方法 | 第78页 |
| 5.1.2 动物材料与试验设计 | 第78-79页 |
| 5.1.3 测试指标与方法 | 第79-80页 |
| 5.1.4 数据统计分析方法 | 第80页 |
| 5.2 试验结果与分析 | 第80-86页 |
| 5.2.1 观赏海棠叶片中粗提物的抗氧化特征 | 第80-82页 |
| 5.2.2 观赏海棠叶片粗提物在线的抗氧化特征 | 第82-84页 |
| 5.2.3 观赏海棠叶片粗提物在动物模型中的抗氧化分析 | 第84-86页 |
| 5.3 本章小结 | 第86-87页 |
| 第6章 观赏海棠叶片中类黄酮化合物的提取，分离与纯化 | 第87-106页 |
| 6.1 试验材料与方法 | 第87-92页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第87页 |
| 6.1.2 试验试剂 | 第87页 |
| 6.1.3 试验主要仪器与条件 | 第87-89页 |
| 6.1.4 提取工艺 | 第89-92页 |
| 6.2 结果与分析 | 第92-105页 |
| 6.2.1 从观赏海棠中首次提取分离纯化得到的新化合物的结构鉴定 | 第92-95页 |
| 6.2.2 从观赏海棠中提取分离纯化得到的其它化合物的结构解析 | 第95-105页 |
| 6.3 本章小结 | 第105-106页 |
| 第7章 观赏海棠二氢查尔酮化合物的抗癌活性研究 | 第106-113页 |
| 7.1 试验材料与试剂 | 第106-107页 |
| 7.2 主要试验仪器及设备 | 第107页 |
| 7.3 试验步骤 | 第107-108页 |
| 7.3.1 细胞培养 | 第107页 |
| 7.3.2 MTT试验 | 第107-108页 |
| 7.4 数据处理 | 第108页 |
| 7.5 结果与分析 | 第108-112页 |
| 7.5.1 二氢查尔酮单体化合物的细胞毒性 | 第108-111页 |
| 7.5.2 二氢查尔酮单体化合物对四种人体癌细胞株的细胞毒性 | 第111-112页 |
| 7.6 本章小结 | 第112-113页 |
| 第8章 调控观赏海棠二氢查尔酮合成的分子机理研究 | 第113-131页 |
| 8.1 试验材料 | 第113-114页 |
| 8.1.1 植物材料 | 第113页 |
| 8.1.2 主要载体和菌株 | 第113页 |
| 8.1.3 试验仪器 | 第113页 |
| 8.1.4 主要化学试剂 | 第113页 |
| 8.1.5 常用培养基配制 | 第113-114页 |
| 8.1.6 常用抗生素配制 | 第114页 |
| 8.2 试验方法 | 第114-119页 |
| 8.2.1 MCCHS基因和MCUDPG基因CDS序列克隆 | 第114-116页 |
| 8.2.2 实时荧光定量PCR | 第116-117页 |
| 8.2.3 载体构建 | 第117-118页 |
| 8.2.4 农杆菌感受态细胞制备 | 第118-119页 |
| 8.2.5 农杆菌感受态的转化及阳性克隆的鉴定 | 第119页 |
| 8.2.6 瞬时转化 | 第119页 |
| 8.2.7 转基因检测 | 第119页 |
| 8.3 数据统计方法 | 第119-120页 |
| 8.4 结果与分析 | 第120-130页 |
| 8.4.1 沉默MCMYB10基因对二氢查尔酮化合物的影响 | 第120-123页 |
| 8.4.2 沉默MCMYB16基因对二氢查尔酮化合物的影响 | 第123-127页 |
| 8.4.3 乙酰化对观赏海棠叶片中二氢查尔酮根皮苷合成的调控作用 | 第127-130页 |
| 8.5 本章小结 | 第130-131页 |
| 结论与展望 | 第131-134页 |
| 1. 结论 | 第131-132页 |
| 2. 本论文主要创新点 | 第132页 |
| 3. 展望 | 第132-134页 |
| 参考文献 | 第134-144页 |
| 附录 | 第144-168页 |
| 致谢 | 第168-170页 |
| 在学期间的科研成果 | 第170页 |
| 在学期间参加的科研项目 | 第170页 |
