中文摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-14页 |
英文缩略表 | 第15-17页 |
文献综述 | 第17-25页 |
前言 | 第25-27页 |
一. JPF不同提取部位对大鼠BMSCs成骨成脂分化调节的比较研究 | 第27-39页 |
1. 材料与试剂 | 第27-28页 |
1.1 实验动物 | 第27页 |
1.2 实验用细胞 | 第27页 |
1.3 药物 | 第27页 |
1.4 实验用试剂和仪器 | 第27-28页 |
1.5 成骨分化培养基的配制 | 第28页 |
2. 实验方法 | 第28-31页 |
2.1 JPF不同萃取部位的制备 | 第29页 |
2.2 BMSCs的分离与培养 | 第29页 |
2.3 BMSCs的传代培养 | 第29页 |
2.4 BMSCs增殖水平的检测 | 第29-30页 |
2.5 BMSCs成骨分化诱导 | 第30页 |
2.6 碱性磷酸酶(ALP)染色 | 第30页 |
2.7 茜素红(ARS)染色 | 第30页 |
2.8 BMSCs成脂分化诱导 | 第30页 |
2.9 油红O染色 | 第30-31页 |
2.10 统计分析 | 第31页 |
3. 实验结果 | 第31-35页 |
3.1 细胞形态 | 第31页 |
3.2 细胞传代 | 第31页 |
3.3 JPF不同提取部位对BMSCs增殖的影响 | 第31-32页 |
3.4 JPF不同提取部位对ALP活性的影响 | 第32-33页 |
3.5 JPF不同提取部位对BMSCs成骨分化中钙结节形成的影响 | 第33-34页 |
3.6 JPF不同提取部位对BMSCs成脂分化的影响 | 第34-35页 |
4. 讨论 | 第35-38页 |
5. 小结 | 第38-39页 |
二. JPF提取水部位对成骨分化的影响及其机制研究 | 第39-57页 |
1. 实验材料 | 第39-41页 |
1.1 实验细胞 | 第39页 |
1.2 WB实验用试剂及药品 | 第39-40页 |
1.3 WB实验试剂及配置方法 | 第40页 |
1.4 PCR实验试剂及仪器 | 第40-41页 |
2. 实验方法 | 第41-46页 |
2.1 ALP染色 | 第41页 |
2.2 ARS染色 | 第41页 |
2.3 油红O染色 | 第41页 |
2.4 通路抑制剂的配制 | 第41页 |
2.5 实验分组 | 第41页 |
2.6 细胞上清指标检测 | 第41-42页 |
2.7 细胞蛋白的样品制备 | 第42页 |
2.8 蛋白浓度的定量测定 | 第42-43页 |
2.9 WB检测蛋白表达 | 第43页 |
2.10 细胞RNA样品的提取 | 第43-45页 |
2.11 细胞迁移实验 | 第45-46页 |
2.12 统计分析 | 第46页 |
3. 实验结果 | 第46-54页 |
3.1 JPF提取水部位不同浓度对BMSCs成骨分化过程中ALP活性的影响 | 第46-47页 |
3.2 JPF水部位不同浓度对细胞上清中BMP-2和β-catenin表达水平的影响 | 第47-48页 |
3.3 Real-time PCR实验结果 | 第48-49页 |
3.4 DKK-1以及Noggin对BMSCs成骨分化的影响 | 第49-52页 |
3.5 JPF提取水部位对BMSCs迁移的影响 | 第52-53页 |
3.6 JPF提取水部位对BMSCs成脂分化的影响 | 第53-54页 |
4. 讨论 | 第54-56页 |
5. 小结 | 第56-57页 |
三. JPF提取乙酸乙酯部位抑制BMSCs成脂分化的分子机制研究 | 第57-67页 |
1. 材料与试剂 | 第57页 |
1.1 实验细胞 | 第57页 |
1.2 实验用试剂及材料 | 第57页 |
2. 实验方法 | 第57-59页 |
2.1 通路抑制剂的配制 | 第57页 |
2.2 实验分组 | 第57页 |
2.3 成脂诱导分化 | 第57页 |
2.4 细胞蛋白样品的制备以及WB实验方法 | 第57-58页 |
2.5 细胞RNA样本的制备、反转录以及Real-time PCR实验方法 | 第58-59页 |
2.6. 统计分析 | 第59页 |
3. 实验结果 | 第59-63页 |
3.1 Real-time PCR实验结果 | 第59-61页 |
3.2 JPF发挥抑制成脂分化的作用途径 | 第61-63页 |
4. 讨论 | 第63-64页 |
5. 小结 | 第64-67页 |
全文总结 | 第67-71页 |
结论 | 第71-73页 |
参考文献 | 第73-83页 |
致谢 | 第83-85页 |
个人简历 | 第85-86页 |