| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 绪论 | 第12-28页 |
| 第一章：前列腺发育和再生中的细胞分裂模式研究 | 第28-52页 |
| 1.1 引言 | 第28-34页 |
| 1.1.1 干细胞不对称分裂机制 | 第28-32页 |
| 1.1.2 干细胞对称分裂机制 | 第32-34页 |
| 1.2 材料与方法 | 第34-38页 |
| 1.2.1 一抗信息及使用浓度 | 第34页 |
| 1.2.2 主要实验试剂 | 第34-35页 |
| 1.2.3 主要实验仪器 | 第35页 |
| 1.2.4 动物实验 | 第35-36页 |
| 1.2.5 冰冻切片免疫荧光染色 | 第36页 |
| 1.2.6 细胞有丝分裂纺锤体轴定位 | 第36-37页 |
| 1.2.7 图片获取及数据分析 | 第37-38页 |
| 1.3 实验结果 | 第38-48页 |
| 1.3.1 前列腺基底细胞和腔细胞鉴定 | 第38-39页 |
| 1.3.2 前列腺基底细胞和腔细胞的极性方式分析 | 第39-41页 |
| 1.3.3 基底细胞和腔细胞的细胞间连接方式比较 | 第41-42页 |
| 1.3.4 前列腺发育时期的细胞分裂状态分析 | 第42-44页 |
| 1.3.5 基底细胞和腔细胞的纺锤体轴定位模式鉴定 | 第44-46页 |
| 1.3.6 前列腺再生时期的细胞分裂模式分析 | 第46-48页 |
| 1.4 讨论 | 第48-51页 |
| 1.4.1 细胞分裂状态和细胞类型 | 第48页 |
| 1.4.2 细胞极性和细胞分裂模式 | 第48-51页 |
| 1.5 小结与展望 | 第51-52页 |
| 第二章：谱系追踪和细胞命运观察 | 第52-75页 |
| 2.1 引言 | 第52-53页 |
| 2.2 材料和方法 | 第53-57页 |
| 2.2.1 小鼠资源及基因型鉴定 | 第53-54页 |
| 2.2.2 抗体及使用浓度 | 第54页 |
| 2.2.3 主要试剂 | 第54-55页 |
| 2.2.4 其他试剂和使用仪器 | 第55页 |
| 2.2.5 细胞谱系追踪实验 | 第55-56页 |
| 2.2.6 肾包膜移植实验 | 第56页 |
| 2.2.7 冰冻切片及染色 | 第56-57页 |
| 2.2.8 图像获取及数据分析 | 第57页 |
| 2.3. 实验结果 | 第57-72页 |
| 2.3.1 双重染色鉴定前列腺上皮细胞三种分裂模式 | 第57-60页 |
| 2.3.2 三重免疫荧光染色观察腔细胞对称分裂 | 第60-61页 |
| 2.3.3 腔细胞谱系追踪 | 第61-64页 |
| 2.3.4 三重免疫荧光染色观察基底细胞不对称分裂 | 第64-66页 |
| 2.3.5 基底细胞命运追踪 | 第66-68页 |
| 2.3.6 p63敲除小鼠前列腺谱系鉴定 | 第68-70页 |
| 2.3.7 基底细胞缺失对腔细胞分裂的影响分析 | 第70-72页 |
| 2.4 讨论 | 第72-73页 |
| 2.5 小结和展望 | 第73-75页 |
| 第三章：前列腺肿瘤中细胞分裂模式研究 | 第75-93页 |
| 3.1 引言 | 第75-78页 |
| 3.1.1 肿瘤干细胞分裂机制 | 第75-76页 |
| 3.1.2 抑癌基因PTEN与肿瘤发生 | 第76-78页 |
| 3.2 材料与方法 | 第78-81页 |
| 3.2.1 小鼠资源 | 第78页 |
| 3.2.2 抗体 | 第78页 |
| 3.2.3 主要实验试剂 | 第78-79页 |
| 3.2.4 主要实验仪器 | 第79-80页 |
| 3.2.5 冰冻切片免疫荧光染色 | 第80页 |
| 3.2.6 石蜡切片及免疫组化 | 第80-81页 |
| 3.2.7 图片获取及数据分析 | 第81页 |
| 3.3 实验结果 | 第81-89页 |
| 3.3.1 建立小鼠前列腺肿瘤模型 | 第81-83页 |
| 3.3.2 前列腺肿瘤亚克隆表型鉴定 | 第83-85页 |
| 3.3.3 肿瘤基底细胞和腔细胞的分裂模式分析 | 第85-87页 |
| 3.3.4 Pten缺失对腔细胞极性及分裂轴定位影响分析 | 第87-89页 |
| 3.4 讨论 | 第89-91页 |
| 3.4.1 基底细胞和腔细胞都能作为前列腺癌细胞起源 | 第89-91页 |
| 3.4.2 细胞极性在肿瘤发生发展中的作用 | 第91页 |
| 3.5 小结与展望 | 第91-93页 |
| 第四章：干细胞标志物表达模式研究 | 第93-110页 |
| 4.1 引言 | 第93-95页 |
| 4.2 材料与方法 | 第95-98页 |
| 4.2.1 小鼠资源 | 第95页 |
| 4.2.2 主要实验试剂 | 第95-96页 |
| 4.2.3 抗体信息以及使用浓度 | 第96页 |
| 4.2.4 动物实验 | 第96-97页 |
| 4.2.5 冰冻切片免疫荧光染色 | 第97页 |
| 4.2.6 石蜡切片免疫组化染色 | 第97-98页 |
| 4.2.7 流式细胞分析 | 第98页 |
| 4.2.8 图片获取及数据分析 | 第98页 |
| 4.3 实验结果 | 第98-107页 |
| 4.3.1 Sox2在野生型小鼠前列腺中的表达模式 | 第98-99页 |
| 4.3.2 Sox2在基底细胞缺失型以及肿瘤型前列腺中的表达模式 | 第99-101页 |
| 4.3.3 Sox2阳性细胞在前列腺肿瘤中的分裂状态分析 | 第101-102页 |
| 4.3.4 Trop2在人前列腺癌组织中的表达状况分析 | 第102-103页 |
| 4.3.5 Trop2在小鼠前列腺上皮中的表达模式 | 第103-105页 |
| 4.3.6 Trop2在基底细胞不对称分裂后的表达模式分析 | 第105-106页 |
| 4.3.7 Trop2细胞在小鼠前列腺肿瘤中的扩增状况分析 | 第106-107页 |
| 4.4 讨论 | 第107-109页 |
| 4.4.1 Sox2阳性腔细胞与基底细胞的谱系发生关系 | 第107-108页 |
| 4.4.2 Trop2阳性腔细胞与基底细胞的谱系发生关系 | 第108-109页 |
| 4.5 小结与展望 | 第109-110页 |
| 全文总结与展望 | 第110-116页 |
| 附录 | 第116-121页 |
| 符号和标记 | 第121-122页 |
| 致谢 | 第122-124页 |
| 博士发表文章及参加会议情况 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-134页 |
