| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 海洋石油污染现状 | 第13-14页 |
| 1.1.1 海洋石油污染的原因 | 第13页 |
| 1.1.2 海洋石油污染的危害 | 第13-14页 |
| 1.2 海洋石油污染修复方法概况 | 第14-15页 |
| 1.2.1 物理方法 | 第14页 |
| 1.2.2 化学方法 | 第14页 |
| 1.2.3 生物方法 | 第14-15页 |
| 1.3 鼠李糖脂研究现状 | 第15-22页 |
| 1.3.1 生产鼠李糖脂菌株的发现与筛选 | 第15页 |
| 1.3.2 鼠李糖脂的结构及性质 | 第15-17页 |
| 1.3.3 鼠李糖脂生物合成途径 | 第17-18页 |
| 1.3.4 影响鼠李糖脂发酵的因素 | 第18页 |
| 1.3.5 发酵液中鼠李糖脂定量方法的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3.6 鼠李糖脂分离方法概况 | 第19页 |
| 1.3.7 鼠李糖脂同系物的研究现状 | 第19-21页 |
| 1.3.8 鼠李糖脂应用现状 | 第21-22页 |
| 1.4 铜绿假单胞菌生物降解特性的研究概况 | 第22-23页 |
| 1.4.1 铜绿假单胞菌对正构烷烃的降解特性 | 第22页 |
| 1.4.2 铜绿假单胞菌对单苯环物质和多苯环物质的降解特性 | 第22-23页 |
| 1.5 环境微生物相互拮抗研究进展 | 第23页 |
| 1.6 T-RFLP分析技术 | 第23-24页 |
| 1.7 研究意义、内容和创新 | 第24-27页 |
| 1.7.1 研究意义 | 第24-25页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 1.7.3 创新之处 | 第26-27页 |
| 第二章 铜绿假单胞菌Zs1的筛选与鉴定 | 第27-36页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.1 主要实验试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.2 主要实验仪器 | 第28页 |
| 2.1.3 矿物盐培养基(MSM)配方 | 第28页 |
| 2.1.4 LB培养基配方 | 第28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-31页 |
| 2.2.1 样品处理及富集培养 | 第28-29页 |
| 2.2.2 富集菌株的保存 | 第29页 |
| 2.2.3 T-RFLP对菌株富集培养的分析 | 第29-30页 |
| 2.2.4 单菌落16S rDNA PCR | 第30-31页 |
| 2.2.5 单菌落16S rDNA测序分析绘制进化树 | 第31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-35页 |
| 2.3.1 16S rDNA PCR及T-RFLP | 第31-33页 |
| 2.3.2 进化树的构建确定菌种类型 | 第33-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第三章 Zs1乳化活性及石油降解活性的测定 | 第36-53页 |
| 3.1 材料和仪器 | 第36-37页 |
| 3.1.1 主要实验试剂 | 第36页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第36-37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-41页 |
| 3.2.1 Zs1乳化活性的测定 | 第37-38页 |
| 3.2.2 Zs1生长曲线的测定 | 第38页 |
| 3.2.3 Zs1降解油活性的测定 | 第38-39页 |
| 3.2.4 荧光定量PCR | 第39页 |
| 3.2.5 扫描电镜和透射电镜观察细胞特征 | 第39-41页 |
| 3.2.5.1 扫描电镜样品制备方法 | 第39-40页 |
| 3.2.5.2 透射电镜样品制备方法 | 第40-41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-52页 |
| 3.3.1 排油圈和E24 | 第41-42页 |
| 3.3.2 生长曲线与表面张力曲线 | 第42-44页 |
| 3.3.3 鼠李糖脂产量的测定 | 第44-45页 |
| 3.3.4 不同葡萄糖浓度的生长曲线及乳化活性 | 第45-47页 |
| 3.3.5 荧光定量PCR | 第47-48页 |
| 3.3.6 电镜观察结果 | 第48-50页 |
| 3.3.7 Zs1降解油的活性 | 第50-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 鼠李糖脂的化学分析 | 第53-65页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第53-54页 |
| 4.1.1 主要试剂 | 第53页 |
| 4.1.2 主要仪器 | 第53-54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-56页 |
| 4.2.1 鼠李糖脂的提取与纯化 | 第54页 |
| 4.2.2 琼脂免疫扩散共沉淀实验 | 第54页 |
| 4.2.3 TLC薄层层析 | 第54-55页 |
| 4.2.4 RL7-11的LC-MS/MS分析 | 第55页 |
| 4.2.5 RL7-11和SDS临界胶团浓度(CMC)的测定 | 第55页 |
| 4.2.6 RL7-11在不同条件下乳化活性的分析 | 第55-56页 |
| 4.2.7 RL7-11和SDS不同浓度溶液的表面张力测定以及E24实验 | 第56页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第56-64页 |
| 4.3.1 琼脂免疫扩散共沉淀实验 | 第56-58页 |
| 4.3.2 RL7-11的TLC及LC-MS/MS分析 | 第58-62页 |
| 4.3.3 RL7-11在不同条件下乳化活性 | 第62-64页 |
| 4.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 第五章 微生物之间相互拮抗现象的研究 | 第65-81页 |
| 5.1 主要试剂和仪器 | 第66页 |
| 5.1.1 主要试剂 | 第66页 |
| 5.1.2 主要仪器 | 第66页 |
| 5.2 实验方法 | 第66-70页 |
| 5.2.1 T-RFLP分析不同营养条件微生物种类 | 第66-68页 |
| 5.2.2 混合菌株的生长曲线及排油圈实验 | 第68页 |
| 5.2.3 分离两种培养条件下的菌株 | 第68-69页 |
| 5.2.4 纯化的菌株在两种营养条件下的生长情况 | 第69页 |
| 5.2.5 不同菌株之间相互拮抗关系的确定 | 第69页 |
| 5.2.6 优势菌株发酵产物的抑菌圈实验 | 第69-70页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第70-79页 |
| 5.4 本章小结 | 第79-81页 |
| 第六章 结论与展望 | 第81-83页 |
| 6.1 结论 | 第81-82页 |
| 6.2 展望 | 第82-83页 |
| 作者简介 | 第83-84页 |
| 附录 | 第84-86页 |
| 参考文献 | 第86-92页 |
