摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
缩略词 | 第14-16页 |
引言 | 第16-18页 |
第一章 文献综述 | 第18-34页 |
1 甜菊的研究进展 | 第18-21页 |
1.1 甜菊的栽培历史 | 第18页 |
1.2 甜菊育种研究进展 | 第18-21页 |
2 甜菊糖苷简介 | 第21-26页 |
2.1 甜菊糖苷的安全性 | 第23-24页 |
2.2 甜菊糖苷的生物活性 | 第24-26页 |
3 甜菊糖苷的生物合成途径和SrUGT76G1基因研究进展 | 第26-29页 |
3.1 甜菊糖苷的生物合成途径 | 第27页 |
3.2 SrUGT76G1基因研究进展 | 第27-29页 |
4 植物启动子的研究进展 | 第29-33页 |
4.1 启动子的结构 | 第29页 |
4.2 启动子类型 | 第29-30页 |
4.3 启动子功能的研究方法 | 第30-33页 |
5 立题依据与主要研究内容 | 第33-34页 |
第二章 甜菊糖苷含量测定及低RA昔优选单株获得 | 第34-42页 |
1 材料与方法 | 第35-36页 |
1.1 仪器试剂 | 第35页 |
1.2 植物材料 | 第35页 |
1.3 试验方法 | 第35-36页 |
2 结果分析 | 第36-39页 |
2.1 标准曲线的绘制 | 第36页 |
2.2 杂交F_1代单株糖苷含量测定 | 第36-38页 |
2.3 低RA昔优选单株的获得 | 第38-39页 |
3 讨论 | 第39-42页 |
第三章 甜菊SrUGT76G1基因克隆及低RA苷优选单株验证 | 第42-58页 |
1 材料与方法 | 第43-49页 |
1.1 仪器试剂 | 第43-44页 |
1.2 植物材料 | 第44页 |
1.3 试验方法 | 第44-49页 |
2 结果分析 | 第49-55页 |
2.1 SrUGT76G1的克隆 | 第49页 |
2.2 无义突变的发现 | 第49-50页 |
2.3 碱基替换导致氨基酸序列改变 | 第50-54页 |
2.4 SrUGT76G1体外酶活性分析 | 第54-55页 |
3 讨论 | 第55-58页 |
第四章 甜菊糖苷合成相关基因的表达特性分析 | 第58-72页 |
第一节 甜菊糖苷合成相关基因的半定量分析 | 第58-66页 |
1 材料与方法 | 第59-62页 |
1.1 仪器试剂 | 第59页 |
1.2 植物材料 | 第59-60页 |
1.3 试验方法 | 第60-62页 |
2 结果分析 | 第62-64页 |
2.1 相对低温和高温抑制糖苷合成途径中基因的转录 | 第62页 |
2.2 在水分胁迫下大部分相关基因的转录水平下降 | 第62-63页 |
2.3 光周期对相关基因转录水平的影响 | 第63页 |
2.4 处于不同生长阶段的植株中糖苷含量和相关基因转录水平的变化 | 第63-64页 |
3 讨论 | 第64-66页 |
第二节 SrUGT76G1基因表达特性的实时荧光定量PCR分析 | 第66-72页 |
1 材料与方法 | 第66-69页 |
1.1 仪器试剂 | 第66-67页 |
1.2 植物材料 | 第67页 |
1.3 试验方法 | 第67-69页 |
2 结果分析 | 第69-70页 |
2.1 不同光周期处理下SrUGT76G1的表达分析 | 第69页 |
2.2 不同生长阶段的SrUGT76G1表达分析 | 第69-70页 |
2.3 SrUGT76G1相对表达量的昼夜变化 | 第70页 |
3 讨论 | 第70-72页 |
第五章 甜菊SrUGT76G1基因启动子克隆及序列分析 | 第72-88页 |
1 材料与方法 | 第73-80页 |
1.1 仪器试剂 | 第73页 |
1.2 植物材料 | 第73-74页 |
1.3 试验方法 | 第74-80页 |
2 结果分析 | 第80-85页 |
2.1 SrUGT76G1启动子序列的获得 | 第80页 |
2.2 启动子顺式作用元件预测和序列分析 | 第80-82页 |
2.3 含双酶切位点SrUGT76G1基因启动子片段的获得 | 第82-84页 |
2.4 SrUGT76G1基因启动子植物表达载体的构建 | 第84页 |
2.5 基因瞬时表达分析 | 第84-85页 |
3 讨论 | 第85-88页 |
全文结论及创新之处 | 第88-90页 |
参考文献 | 第90-102页 |
附录 | 第102-126页 |
攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第126-128页 |
致谢 | 第128页 |