| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 缩略词表(ABBREVIATIONS) | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-33页 |
| 1 植物试管苗玻璃化研究进展 | 第15-19页 |
| 1.1 试管苗玻璃化现象及其不利影响 | 第15页 |
| 1.2 玻璃化试管苗的基本特征 | 第15-17页 |
| 1.3 试管苗玻璃化发生的影响因素 | 第17-18页 |
| 1.4 试管苗玻璃化发生机理研究现状 | 第18-19页 |
| 1.5 试管苗玻璃化防控措施 | 第19页 |
| 2 植物活性氧代谢研究进展 | 第19-24页 |
| 2.1 植物活性氧的产生途径 | 第19-21页 |
| 2.2 活性氧对植物的双重作用 | 第21-22页 |
| 2.3 植物活性氧的清除机制 | 第22-24页 |
| 3 MICRORNA研究进展 | 第24-30页 |
| 3.1 miRNA的合成与表达 | 第24-26页 |
| 3.2 miRNA的研究方法 | 第26-28页 |
| 3.3 miRNA与逆境胁迫 | 第28-30页 |
| 4 研究背景和主要内容 | 第30-33页 |
| 4.1 研究背景 | 第30页 |
| 4.2 研究目的 | 第30-31页 |
| 4.3 研究内容及技术路线 | 第31-33页 |
| 第二章 外源H_2O_2对大蒜试管苗玻璃化发生及生理特性的影响 | 第33-43页 |
| 1 材料与方法 | 第34-36页 |
| 1.1 试验材料培养 | 第34-35页 |
| 1.2 试验设计和处理 | 第35页 |
| 1.3 测定指标和方法 | 第35-36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-40页 |
| 2.1 不同浓度外源H_2O_2处理对大蒜试管苗玻璃化的影响 | 第36-37页 |
| 2.2 外源H_2O_2处理对玻璃化试管苗外观形态及气孔特征的影响 | 第37-38页 |
| 2.3 外源H_2O_2处理对试管苗组织含水量和叶绿素含量的影响 | 第38-39页 |
| 2.4 外源H_2O_2处理对大蒜试管苗可溶性蛋白含量和特异蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-42页 |
| 4 小结 | 第42-43页 |
| 第三章 外源H_2O_2对大蒜试管苗玻璃化过程中细胞超微结构和细胞器活性氧代谢的影响 | 第43-57页 |
| 1 材料与方法 | 第45-47页 |
| 1.1 试验材料培养 | 第45页 |
| 1.2 试验设计和处理 | 第45页 |
| 1.3 测定指标和方法 | 第45-47页 |
| 2 结果与分析 | 第47-54页 |
| 2.1 外源H_2O_2对大蒜试管苗玻璃化率及玻璃化指数的影响 | 第48-49页 |
| 2.2 外源H_2O_2处理对大蒜试管苗超微结构的影响 | 第49-50页 |
| 2.3 外源H_2O_2处理对大蒜试管苗亚细胞器活性氧代谢的影响 | 第50-54页 |
| 3 讨论 | 第54-56页 |
| 4 小结 | 第56-57页 |
| 第四章 外源H_2O_2和活性氧催化酶抑制剂对大蒜试管苗玻璃化发生及内源活性氧代谢的影响 | 第57-73页 |
| 1 材料与方法 | 第59-62页 |
| 1.1 试验材料 | 第59页 |
| 1.2 试验设计和处理 | 第59-60页 |
| 1.3 试管苗玻璃化率调查和内源活性氧测定 | 第60页 |
| 1.4 O_2(·-)和H_2O_2的组织化学检测 | 第60-61页 |
| 1.5 H_2O_2细胞化学检测 | 第61页 |
| 1.6 质膜NADPH氧化酶活性测定 | 第61页 |
| 1.7 细胞壁POD活性测定 | 第61-62页 |
| 1.8 质外体PAO活性测定 | 第62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-69页 |
| 2.1 外源H_2O_2诱导大蒜试管苗玻璃化发生及O_2~(·-)产生和H_2O_2累积的关系 | 第62-63页 |
| 2.2 不同处理下大蒜试管苗内源O_2~(·-)和H_2O_2的组织化学检测 | 第63-65页 |
| 2.3 不同处理下大蒜试管苗内源H_2O_2的细胞化学检测 | 第65-66页 |
| 2.4 外源H_2O_2及活性氧催化酶抑制剂对试管苗产生内源活性氧的影响 | 第66-67页 |
| 2.5 不同处理下试管苗质膜NADPH氧化酶、细胞壁POD及质外体PAO活性的动态变化 | 第67-69页 |
| 3 讨论 | 第69-70页 |
| 3.1 试管苗玻璃化发生与内源活性氧动态变化 | 第69页 |
| 3.2 活性氧催化酶对试管苗内源活性氧累积的影响 | 第69-70页 |
| 3.3 活性氧催化酶变化与试管苗玻璃化发生 | 第70页 |
| 4 小结 | 第70-73页 |
| 第五章 大蒜玻璃化试管苗细胞壁与细胞膜结构、组成及功能分析 | 第73-87页 |
| 1 材料与方法 | 第74-77页 |
| 1.1 试验材料培养 | 第74页 |
| 1.2 试验设计和处理 | 第74-75页 |
| 1.3 测定指标和方法 | 第75-77页 |
| 2 结果与分析 | 第77-84页 |
| 2.1 大蒜玻璃化试管苗与正常试管苗的获得 | 第77页 |
| 2.2 大蒜玻璃化试管苗与正常试管苗细胞壁及细胞膜结构的差异 | 第77-78页 |
| 2.3 大蒜玻璃化试管苗与正常试管苗细胞壁及细胞膜物质构成差异 | 第78-80页 |
| 2.4 大蒜玻璃化试管苗与正常试管苗细胞膜功能差异 | 第80-84页 |
| 3 讨论 | 第84-86页 |
| 4 小结 | 第86-87页 |
| 第六章 大蒜试管苗响应外源H_2O_2的MICRORNAS及其靶基因鉴定与分析 | 第87-107页 |
| 1 材料与方法 | 第88-90页 |
| 1.1 试验材料培养 | 第88-89页 |
| 1.2 试验设计和处理 | 第89页 |
| 1.3 小RNA和降解组高通量测序 | 第89-90页 |
| 2 结果与分析 | 第90-103页 |
| 2.1 两个小RNA文库的数据分析 | 第90-92页 |
| 2.2 大蒜试管苗保守miRNAs的鉴定 | 第92-94页 |
| 2.3 大蒜试管苗新miRNAs的鉴定 | 第94-95页 |
| 2.4 大蒜试管苗miRNAs差异表达分析 | 第95-96页 |
| 2.5 大蒜试管苗miRNAs靶基因的鉴定 | 第96-97页 |
| 2.6 大蒜试管苗miRNAs靶基因的功能分析 | 第97-103页 |
| 3 讨论 | 第103-105页 |
| 3.1 大蒜试管苗响应氧化胁迫的miRNAs及其差异表达分析 | 第103-104页 |
| 3.2 大蒜试管苗响应氧化胁迫的miRNAs靶基因分析 | 第104页 |
| 3.3 大蒜试管苗氧化胁迫响应miRNAs与靶基因关系分析 | 第104-105页 |
| 4 小结 | 第105-107页 |
| 全文讨论 | 第107-109页 |
| 全文结论 | 第109-111页 |
| 创新点 | 第111-113页 |
| 参考文献 | 第113-129页 |
| 读博期间论文发表情况 | 第129-131页 |
| 致谢 | 第131页 |
