| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-26页 |
| 1.1 循环肿瘤细胞(CTCs)的研究背景及临床意义 | 第11-12页 |
| 1.2 循环肿瘤细胞的形成、捕获及鉴定方法 | 第12-19页 |
| 1.2.1 CTCs的形成 | 第12-13页 |
| 1.2.2 CTCs的捕获方法 | 第13-18页 |
| 1.2.2.1 基于物理生物原理的CTCs捕获方法 | 第14-16页 |
| 1.2.2.2 基于化学生物原理的CTCs捕获方法 | 第16-18页 |
| 1.2.3 CTCs的检测方法 | 第18-19页 |
| 1.3 功能化纳米材料在循环肿瘤细胞研究中的应用 | 第19-20页 |
| 1.3.1 功能化纳米材料的概述 | 第19页 |
| 1.3.2 功能化纳米材料用于循环肿瘤细胞的捕获 | 第19-20页 |
| 1.4 微流控芯片技术在循环肿瘤细胞研究中的应用 | 第20-25页 |
| 1.4.1 微流控芯片技术概述 | 第20-21页 |
| 1.4.2 微流控芯片的制备 | 第21-24页 |
| 1.4.3 微流控芯片技术用于循环肿瘤细胞的捕获 | 第24-25页 |
| 1.5 论文的选题及研究内容 | 第25-26页 |
| 第二章 Zn S:Mn~(2+)量子点和Fe_3O_4 复合材料用于循环肿瘤细胞捕获和检测 | 第26-41页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验部分 | 第27-34页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第27-28页 |
| 2.2.2 细胞预处理 | 第28-29页 |
| 2.2.2.1 细胞复苏 | 第28页 |
| 2.2.2.2 细胞传代 | 第28-29页 |
| 2.2.2.3 细胞计数 | 第29页 |
| 2.2.3 癌症病人的外周血血样处理 | 第29页 |
| 2.2.4 Zn S:Mn~(2+)QDs和 Fe_3O_4/SiO_2 材料的制备 | 第29-31页 |
| 2.2.5 Zn S:Mn~(2+)QDs和 Fe_3O_4/SiO_2 的表面修饰 | 第31-32页 |
| 2.2.6 循环肿瘤细胞的捕获 | 第32-33页 |
| 2.2.7 外周血中捕获循环肿瘤细胞 | 第33-34页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第34-40页 |
| 2.3.1 Zn S:Mn~(2+)QDs和Fe_3O_4/SiO_2 材料的表征 | 第34-36页 |
| 2.3.2 Zn S:Mn~(2+)QDs和 Fe_3O_4/SiO_2对CTCs的快速鉴定 | 第36-37页 |
| 2.3.3 Zn S:Mn~(2+)QDs和 Fe_3O_4/SiO_2 捕获效率的条件优化 | 第37-38页 |
| 2.3.4 Zn S:Mn~(2+)QDs和 Fe_3O_4/SiO_2 对外周血中CTCs的鉴定 | 第38-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 ZnO纳米线集成微流控芯片用于循环肿瘤细胞捕获和释放 | 第41-58页 |
| 3.1 引言 | 第41-42页 |
| 3.2 实验部分 | 第42-47页 |
| 3.2.1 试剂与设备 | 第42页 |
| 3.2.2 齿轮型PDMS微柱芯片的设计与制备 | 第42-43页 |
| 3.2.3 ZnO纳米线的制备 | 第43-44页 |
| 3.2.4 齿轮型PDMS微柱芯片的表面修饰 | 第44页 |
| 3.2.5 循环肿瘤细胞的捕获 | 第44-45页 |
| 3.2.6 循环肿瘤细胞的释放 | 第45-46页 |
| 3.2.7 细胞活性染色与再培养 | 第46-47页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第47-57页 |
| 3.3.1 ZnO纳米线衬底微柱芯片的表征 | 第47-49页 |
| 3.3.2 不同衬底微柱芯片对CTCs捕获效率的影响 | 第49-51页 |
| 3.3.3 芯片表面Zn O纳米线对CTCs捕获效率的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.4 芯片对人造血中CTCs捕获效率的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.5 柠檬酸盐缓冲液溶液浓度对释放效率和细胞活性的影响 | 第53-55页 |
| 3.3.6 CTCs释放后的活性测定 | 第55-56页 |
| 3.3.7 芯片对病人血液中CTCs的捕获与鉴定 | 第56-57页 |
| 3.4 本章小结 | 第57-58页 |
| 第四章 总结与展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 攻读硕士期间发表的论文及专利 | 第66-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
