| 中文摘要 | 第1-14页 |
| ABSTRACT | 第14-19页 |
| 符号说明 | 第19-20页 |
| 前言 | 第20-27页 |
| 第一部分 左氧氟沙星脂质体的处方筛选及工艺研究 | 第27-41页 |
| 一.仪器材料 | 第27-28页 |
| 1.仪器 | 第27页 |
| 2.材料 | 第27-28页 |
| 二.方法及结果 | 第28-37页 |
| 1.方法学考察 | 第28-33页 |
| ·含量测定方法的建立 | 第28-32页 |
| ·左氧氟沙星脂质体的包封率的测定 | 第32-33页 |
| 2.制备方法的选择 | 第33-35页 |
| ·被动载药法(Passive Loading Method)制备左氧氟沙星脂质体 | 第33-34页 |
| ·主动载药法(Remote Loading Method)制备左氧氟沙星脂质体 | 第34-35页 |
| 3.制备工艺的考察 | 第35-36页 |
| ·透析时间 | 第35页 |
| ·孵化温度 | 第35-36页 |
| ·孵化时间 | 第36页 |
| 4.处方研究 | 第36-37页 |
| 三.讨论 | 第37-41页 |
| 第二部分 PEG包衣左氧氟沙星脂质体的处方筛选及工艺研究 | 第41-48页 |
| 一.仪器材料 | 第41页 |
| 1.仪器 | 第41页 |
| 2.材料 | 第41页 |
| 二.方法及结果 | 第41-46页 |
| 1.方法学考察 | 第42-44页 |
| ·含量测定方法的建立 | 第42-43页 |
| ·PEG包衣左氧氟沙星脂质体的包封率的测定 | 第43-44页 |
| 2.PEG2000包衣脂质体处方筛选 | 第44-46页 |
| ·PEG2000加入方法的考察 | 第44-45页 |
| ·PEG2000加入浓度的考察 | 第45-46页 |
| ·PEG2000包衣脂质体的制备工艺 | 第46页 |
| 三.讨论 | 第46-48页 |
| 第三部分 未包衣脂质体及PEG包衣脂质体的理化性质及初步稳定性研究 | 第48-58页 |
| 一.仪器材料 | 第48页 |
| 1.仪器 | 第48页 |
| 2.材料 | 第48页 |
| 二.方法及结果 | 第48-55页 |
| 1.脂质体的理化性质研究 | 第48-54页 |
| ·脂质体的形态观察 | 第48-49页 |
| ·粒径分布及Zeta电位的测定 | 第49-51页 |
| ·pH值的测定 | 第51页 |
| ·体外释放研究 | 第51-54页 |
| 2.初步稳定性试验 | 第54-55页 |
| 三.讨论 | 第55-58页 |
| 第四部分 未包衣脂质体及PEG包衣脂质体家兔体内药物动力学及小鼠体内组织分布动力学研究 | 第58-81页 |
| 一.仪器材料 | 第58-59页 |
| 1.仪器 | 第58页 |
| 2.材料 | 第58-59页 |
| 3.动物 | 第59页 |
| 二.方法及结果 | 第59-79页 |
| 1.家兔血浆中LVFX含量测定方法的建立 | 第59-62页 |
| ·血浆样品处理 | 第59页 |
| ·色谱条件 | 第59页 |
| ·最低检测限和最低定量限 | 第59-60页 |
| ·标准曲线的制备 | 第60-61页 |
| ·家兔血浆精密度试验 | 第61页 |
| ·回收率试验 | 第61-62页 |
| 2.小鼠组织器官中LVFX含量测定方法的建立 | 第62-69页 |
| ·组织样品处理 | 第62页 |
| ·色谱条件 | 第62-64页 |
| ·最低检测限和最低定量限 | 第64页 |
| ·标准曲线的制备 | 第64-65页 |
| ·精密度试验 | 第65-67页 |
| ·回收率 | 第67-69页 |
| 3.两种脂质体的家兔体内动物试验研究 | 第69-72页 |
| ·实验设计 | 第69页 |
| ·测定方法与结果 | 第69-71页 |
| ·数据处理 | 第71-72页 |
| 4.小鼠体内组织分布动力学研究 | 第72-79页 |
| ·实验设计 | 第72页 |
| ·测定结果 | 第72-76页 |
| ·小鼠体内的肺靶向性评价 | 第76-79页 |
| 三.讨论 | 第79-81页 |
| 总结与展望 | 第81-85页 |
| 一、全文结论 | 第81-83页 |
| 二、创新点 | 第83-84页 |
| 三、展望 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第92-93页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第93页 |
