| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 中英文缩写词对照表 | 第7-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-29页 |
| ·花生的概况 | 第13页 |
| ·花生的成分和营养价值 | 第13-14页 |
| ·花生脂肪 | 第14页 |
| ·花生蛋白质 | 第14页 |
| ·碳水化合物及其他 | 第14页 |
| ·我国花生的利用情况 | 第14-15页 |
| ·水酶法提油工艺概况 | 第15-17页 |
| ·花生蛋白的研究现状 | 第17页 |
| ·生物活性肽 | 第17-20页 |
| ·概述 | 第17-18页 |
| ·肽的吸收机制 | 第18-19页 |
| ·ACE 抑制肽 | 第19页 |
| ·抗氧化活性肽 | 第19-20页 |
| ·立题背景和意义 | 第20页 |
| ·本论文研究的主要内容 | 第20-21页 |
| 参考文献 | 第21-29页 |
| 第二章 水酶法提取花生油和水解蛋白的中试工艺及提油工艺机理初探 | 第29-53页 |
| ·引言 | 第29-30页 |
| ·实验材料与仪器 | 第30-31页 |
| ·实验材料 | 第30页 |
| ·实验设备 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-35页 |
| ·主要成分的测定 | 第31页 |
| ·粉碎后的花生颗粒的粒径分布 | 第31页 |
| ·花生蛋白水解液水解度的测定 | 第31页 |
| ·蛋白酶酶活的测定 | 第31页 |
| ·水解蛋白相对分子质量的测定 | 第31页 |
| ·花生水解蛋白粉氮溶指数（NSI 值）的测定 | 第31-32页 |
| ·油脂理化指标的测定 | 第32页 |
| ·扫描电子显微镜观察花生在酶解过程中的超微结构 | 第32页 |
| ·乳状液的界面蛋白质及水相蛋白质的分离 | 第32-33页 |
| ·表面疏水性的测定 | 第33页 |
| ·蛋白质的圆二色性（CD）测定 | 第33页 |
| ·乳状液的超微结构分析 | 第33页 |
| ·中试工艺流程 | 第33-35页 |
| ·结果与讨论 | 第35-48页 |
| ·中试工艺 | 第35-41页 |
| ·花生的主要成分 | 第35-36页 |
| ·破碎花生的粒径分布 | 第36-37页 |
| ·中试工艺1 中水解液和乳状液的主要成分 | 第37页 |
| ·乳状液的破乳 | 第37页 |
| ·中试产品得率 | 第37-39页 |
| ·油品质分析 | 第39页 |
| ·花生水解蛋白粉的主要成分 | 第39页 |
| ·花生水解蛋白的相对分子质量分布 | 第39-40页 |
| ·花生渣的主要成分 | 第40-41页 |
| ·水酶法提油工艺机理初探 | 第41-48页 |
| ·碱提作用机理 | 第41-42页 |
| ·酶解过程中花生细胞的超微结构 | 第42-44页 |
| ·酶解不同时间的水解度 | 第44页 |
| ·蛋白质的圆二色性 | 第44-45页 |
| ·蛋白质的表面疏水性 | 第45-46页 |
| ·酶解对乳状液的作用 | 第46-48页 |
| ·本章小结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 第三章 花生水解蛋白的理化性质及其抗氧化活性 | 第53-75页 |
| ·引言 | 第53-54页 |
| ·实验材料和仪器 | 第54页 |
| ·实验材料 | 第54页 |
| ·实验仪器 | 第54页 |
| ·实验方法 | 第54-61页 |
| ·成分测定 | 第54页 |
| ·花生蛋白的制备 | 第54-55页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第55页 |
| ·溶解度的测定 | 第55页 |
| ·花生水解蛋白粉的吸水性 | 第55页 |
| ·花生水解蛋白粉的吸油性 | 第55-56页 |
| ·花生水解蛋白粉的乳化性与乳化稳定性 | 第56页 |
| ·起泡性与稳定性 | 第56页 |
| ·蛋白溶液Zeta 电位的测定 | 第56-57页 |
| ·大孔吸附树脂的筛选 | 第57页 |
| ·DA201-C 大孔吸附树脂对花生水解蛋白的静态吸附动力学 | 第57页 |
| ·DA201-C 大孔吸附树脂对花生水解蛋白的静态解吸试验 | 第57-58页 |
| ·DA201-C 大孔吸附树脂对花生水解蛋白的动态吸附和解吸 | 第58页 |
| ·花生水解蛋白脱盐前后的体外抗氧化活性研究 | 第58-60页 |
| ·花生水解蛋白ACE 抑制活性的测定 | 第60-61页 |
| ·结果与讨论 | 第61-72页 |
| ·花生水解蛋白的氨基酸组成 | 第61-62页 |
| ·花生水解蛋白的溶解度 | 第62页 |
| ·花生水解蛋白粉的功能特性 | 第62-63页 |
| ·大孔吸附树脂的筛选 | 第63-64页 |
| ·DA201-C 大孔吸附树脂对花生水解蛋白的静态吸附动力学 | 第64-65页 |
| ·DA201-C 大孔吸附树脂对花生水解蛋白的静态解吸 | 第65页 |
| ·DA201-C 大孔吸附树脂对花生水解蛋白的动态吸附和解吸 | 第65-66页 |
| ·大孔吸附树脂对花生水解蛋白的脱盐效果 | 第66-68页 |
| ·花生水解蛋白及脱盐花生肽的体外抗氧化活性 | 第68-71页 |
| ·花生水解蛋白及脱盐花生肽的ACE 抑制活性 | 第71-72页 |
| ·本章小结 | 第72页 |
| 参考文献 | 第72-75页 |
| 第四章 花生ACE 抑制肽的分离纯化与结构鉴定 | 第75-92页 |
| ·引言 | 第75-76页 |
| ·实验材料和仪器 | 第76页 |
| ·实验材料 | 第76页 |
| ·实验仪器 | 第76页 |
| ·实验方法 | 第76-78页 |
| ·凝胶过滤层析色谱分离脱盐花生肽 | 第76页 |
| ·半制备RP-HPLC 分离花生ACE 抑制肽 | 第76-77页 |
| ·分析型RP-HPLC 分离花生ACE 抑制肽 | 第77页 |
| ·MALDI-TOF-TOF 串联质谱分析花生ACE 抑制肽结构 | 第77页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第77页 |
| ·相对分子质量的测定 | 第77页 |
| ·清除二苯代苦味肼基自由基（DPPH·）能力的测定 | 第77-78页 |
| ·ACE 抑制活性的测定 | 第78页 |
| ·结果与讨论 | 第78-88页 |
| ·Sephadex G-15 分离脱盐花生肽 | 第78-81页 |
| ·半制备RP-HPLC 分离G3 | 第81-82页 |
| ·分析型RP-HPLC 分离G3-R2 和G3-R4 | 第82-83页 |
| ·花生ACE 抑制肽的结构鉴定 | 第83-88页 |
| ·花生肽的结构与ACE 抑制活性的关系 | 第88页 |
| ·本章小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-92页 |
| 第五章 花生ACE 抑制肽的体内降血压功能研究 | 第92-103页 |
| ·引言 | 第92页 |
| ·实验材料和仪器 | 第92-93页 |
| ·实验材料 | 第92-93页 |
| ·实验动物 | 第93页 |
| ·实验仪器 | 第93页 |
| ·实验方法 | 第93-95页 |
| ·花生ACE 抑制肽的合成及分离纯化 | 第93-94页 |
| ·ACE 抑制活性的测定 | 第94页 |
| ·清除二苯代苦味肼基自由基（DPPH·）能力的测定 | 第94页 |
| ·花生ACE 抑制肽体内降血压功能试验 | 第94-95页 |
| ·抗氧化指标测定 | 第95页 |
| ·血脂指标测定 | 第95页 |
| ·数据统计处理方法 | 第95页 |
| ·结果与讨论 | 第95-101页 |
| ·花生肽的ACE 抑制活性及清除DPPH·能力 | 第95-96页 |
| ·花生ACE 抑制肽体内降血压功能实验 | 第96-99页 |
| ·连续灌胃花生ACE 抑制肽对大鼠血浆和肝脏抗氧化能力的影响 | 第99-100页 |
| ·连续灌胃花生ACE 抑制肽对大鼠血脂的影响 | 第100页 |
| ·连续灌胃花生ACE 抑制肽对大鼠动脉粥样硬化指数的影响 | 第100-101页 |
| ·本章小结 | 第101页 |
| 参考文献 | 第101-103页 |
| 主要结论 | 第103-104页 |
| 展望 | 第104-105页 |
| 论文主要创新点 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-107页 |
| 附录:作者攻读博士学位期间发表的论文 | 第107页 |
