| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-24页 |
| 1.1 水稻功能基因组的研究方法——图位克隆 | 第10-13页 |
| 1.1.1 水稻功能基因组 | 第10-11页 |
| 1.1.2 图位克隆 | 第11页 |
| 1.1.3 图位克隆技术环节 | 第11-13页 |
| 1.2 水稻叶色黄化突变体研究进展 | 第13-22页 |
| 1.2.1 水稻叶片黄色突变体的来源 | 第13-14页 |
| 1.2.2 水稻叶片黄色突变体的遗传基础 | 第14页 |
| 1.2.3 水稻叶片黄化基因的分布 | 第14-18页 |
| 1.2.4 水稻黄化突变体的分子机理 | 第18-22页 |
| 1.2.5 水稻叶色突变体研究意义 | 第22页 |
| 1.3 本研究的目的与意义 | 第22-24页 |
| 第二章 突变体HuangS的生理生化及细胞形态学分析 | 第24-32页 |
| 2.1 试验材料 | 第24页 |
| 2.2 试验内容与方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 HuangS形态学观察 | 第24页 |
| 2.2.2 HuangS温度敏感性 | 第24页 |
| 2.2.3 光照对HuangS表型的影响 | 第24页 |
| 2.2.4 光合色素的提取和含量的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.5 野生型和突变体叶绿素合成速率测定 | 第25页 |
| 2.2.6 光合指标的测定 | 第25页 |
| 2.2.7 叶绿体超微结构的观察 | 第25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-30页 |
| 2.3.1 HuangS的形态特征分析 | 第25-27页 |
| 2.3.2 突变体HuangS与野生型在叶绿素含量和光合特性的差异分析 | 第27-29页 |
| 2.3.3 叶绿素合成速率的测定 | 第29-30页 |
| 2.3.4 突变体HuangS与野生型的叶绿体超微结构的分析 | 第30页 |
| 2.4 本章小结 | 第30-32页 |
| 第三章 突变基因YL2的精细定位 | 第32-38页 |
| 3.1 试验材料和方法 | 第32-34页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第32页 |
| 3.1.2 DNA的提取 | 第32页 |
| 3.1.3 SSR标记和InDel标记的开发 | 第32-33页 |
| 3.1.4 基因精细定位和图谱构建 | 第33-34页 |
| 3.1.5 候选基因的预测 | 第34页 |
| 3.2 结果与分析 | 第34-37页 |
| 3.2.1 黄化突变体HuangS的精细定位 | 第34-36页 |
| 3.2.2 候选基因的鉴定及测序比对结果 | 第36-37页 |
| 3.3 本章小结 | 第37-38页 |
| 第四章 突变基因YL2的生物信息学及相关基因的表达分析 | 第38-46页 |
| 4.1 试验材料 | 第38页 |
| 4.2 试验方法 | 第38-39页 |
| 4.2.1 相关基因的表达分析 | 第38页 |
| 4.2.2 基因结构的生物信息学分析 | 第38-39页 |
| 4.3 结果与分析 | 第39-44页 |
| 4.3.1 YL2基因生物信息学分析 | 第39-41页 |
| 4.3.2 YL2基因组织表达分析 | 第41-42页 |
| 4.3.3 叶色及光合相关基因的表达分析 | 第42-44页 |
| 4.4 本章小结 | 第44-46页 |
| 第五章 讨论 | 第46-51页 |
| 5.1 YL2是一个新的控制黄叶基因 | 第46页 |
| 5.2 YL2突变影响叶绿素的合成 | 第46-47页 |
| 5.3 YL2突变影响叶绿体的发育以及光合作用 | 第47-48页 |
| 5.4 YL2基因的功能与表达蛋白的预测分析 | 第48-50页 |
| 5.5 小结与展望 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 附录 | 第61-65页 |
